摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
前言 | 第12-16页 |
材料和方法 | 第16-34页 |
1 实验材料 | 第16-24页 |
1.1 实验动物 | 第16页 |
1.2 胶质瘤样本 | 第16页 |
1.3 细胞系 | 第16页 |
1.4 试剂和耗材 | 第16-19页 |
1.5 仪器和设备 | 第19-20页 |
1.6 溶液配制 | 第20-23页 |
1.7 引物序列 | 第23-24页 |
2 实验方法 | 第24-34页 |
2.1 细胞培养 | 第24页 |
2.2 组织/细胞总mRNA提取及cDNA制备 | 第24-25页 |
2.3 实时定量PCR | 第25-26页 |
2.4 质粒的制备、扩增以及包装慢病毒 | 第26-28页 |
2.5 Ki67免疫荧光实验 | 第28页 |
2.6 划痕实验 | 第28页 |
2.7 蛋白实验 | 第28-29页 |
2.8 CCK-8实验 | 第29-30页 |
2.9 原位杂交 | 第30-33页 |
2.10 统计学分析 | 第33-34页 |
结果 | 第34-43页 |
1 Tgif2 mRNA在小鼠神经干细胞/胶质瘤中高表达 | 第34-35页 |
2 TGIF2 mRNA在人胶质瘤中高表达 | 第35-36页 |
3 TGIF2 mRNA在数据库胶质瘤中高表达 | 第36-37页 |
4 下调TGIF2 mRNA水平降低细胞的活性 | 第37-38页 |
5 下调TGIF2 mRNA水平降低细胞的增殖能力 | 第38-39页 |
6 下调TGIF2 mRNA水平增加细胞的凋亡 | 第39-40页 |
7 下调TGIF2 mRNA水平抑制细胞的迁移能力 | 第40-41页 |
8 下调TGIF2 mRNA水平降低p-AKT和p-ERK1/2蛋白的表达水平 | 第41-43页 |
讨论 | 第43-46页 |
结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
综述 | 第54-65页 |
参考文献 | 第61-65页 |
攻读硕士期间研究成果 | 第65-66页 |
致谢 | 第66-67页 |