| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第13-25页 |
| 1.1 壳寡糖的简介 | 第13-14页 |
| 1.2 壳寡糖的制备研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 酶降解法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 酸降解 | 第15页 |
| 1.2.3 酶酸连续降解 | 第15-16页 |
| 1.2.4 氧化降解 | 第16-17页 |
| 1.2.5 超声波降解 | 第17页 |
| 1.3 壳寡糖的分离方法 | 第17-20页 |
| 1.3.1 离子交换色谱法 | 第17-18页 |
| 1.3.2 固定金属亲和层析色谱法(IMAC)分离壳寡糖 | 第18-19页 |
| 1.3.3 凝胶过滤色谱分离壳寡糖 | 第19-20页 |
| 1.3.4 衍生化法分离壳寡糖 | 第20页 |
| 1.4 壳寡糖及其衍生物在阿尔茨海默病(AD)中的应用 | 第20-23页 |
| 1.4.1 对神经元的保护和再生 | 第21页 |
| 1.4.2 β分泌酶的抑制活性 | 第21-22页 |
| 1.4.3 清除ROS | 第22页 |
| 1.4.4 对铜离子的吸附作用 | 第22-23页 |
| 1.4.5 抑制乙酰胆碱酯酶活性 | 第23页 |
| 1.5 立题依据和研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 壳寡糖单体的制备及其理化性质 | 第25-42页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 壳寡糖混合物COS的制备 | 第26页 |
| 2.2.2 壳寡糖混合物COS的分析 | 第26-27页 |
| 2.2.2.1 薄层层析(TLC)分析 | 第26页 |
| 2.2.2.2 高效液相色谱(HPLC)分析 | 第26-27页 |
| 2.2.2.3 质谱分析 | 第27页 |
| 2.2.3 不同聚合度壳寡糖单体化合物的分离 | 第27页 |
| 2.2.4 壳寡糖单体化合物的纯度分析 | 第27-28页 |
| 2.2.4.1 TLC分析 | 第27页 |
| 2.2.4.2 HPLC分析 | 第27-28页 |
| 2.2.5 壳寡糖单体化合物的结构表征 | 第28页 |
| 2.2.5.1 比旋光度([α]_D~(25))的分析 | 第28页 |
| 2.2.5.2 质谱分析 | 第28页 |
| 2.2.5.3 红外光谱(IR)分析 | 第28页 |
| 2.2.5.4 核磁共振(NMR)分析 | 第28页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第28-40页 |
| 2.3.1 壳寡糖混合物COS的制备 | 第28-29页 |
| 2.3.2 壳寡糖混合物COS的分析 | 第29-32页 |
| 2.3.2.1 COS的TLC分析 | 第29-30页 |
| 2.3.2.2 COS的HPLC分析 | 第30-31页 |
| 2.3.2.3 COS的质谱分析 | 第31-32页 |
| 2.3.3 壳寡糖单体化合物的分离 | 第32-33页 |
| 2.3.4 壳寡糖单体化合物的纯度分析 | 第33-35页 |
| 2.3.4.1 TLC分析 | 第33-34页 |
| 2.3.4.2 HPLC分析 | 第34-35页 |
| 2.3.5 壳寡糖单体化合物的结构表征 | 第35-40页 |
| 2.3.5.1 比旋光度分析 | 第35页 |
| 2.3.5.2 质谱分析 | 第35-37页 |
| 2.3.5.3 壳寡糖单体的红外光谱分析 | 第37-38页 |
| 2.3.5.4 核磁(NMR)分析 | 第38-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 全乙酰及N-乙酰壳寡糖单体的制备及其理化性质 | 第42-60页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第42-43页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第42页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.2.1 全乙酰壳寡糖样品的制备 | 第43页 |
| 3.2.2 全乙酰壳寡糖单体的分离 | 第43-44页 |
| 3.2.3 N-乙酰壳寡糖样品的制备及分离 | 第44页 |
| 3.2.4 单体化合物的纯度分析 | 第44-45页 |
| 3.2.4.1 TLC分析 | 第44页 |
| 3.2.4.2 HPLC分析 | 第44-45页 |
| 3.2.5 单体化合物的结构表征 | 第45-46页 |
| 3.2.5.1 比旋光度([α]_D~(25))的分析 | 第45页 |
| 3.2.5.2 质谱分析 | 第45-46页 |
| 3.2.5.3 红外光谱分析 | 第46页 |
| 3.2.5.4 NMR谱分析 | 第46页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第46-58页 |
| 3.3.1 全乙酰化壳寡糖的制备 | 第46-47页 |
| 3.3.2 全乙酰化壳寡糖的分离纯化 | 第47页 |
| 3.3.3 N-乙酰壳寡糖的制备及分离纯化 | 第47-48页 |
| 3.3.4 单体化合物的纯度分析结果 | 第48-51页 |
| 3.3.4.1 TLC分析 | 第48-49页 |
| 3.3.4.2 HPLC分析 | 第49-51页 |
| 3.3.5 单体化合物的结构表征 | 第51-58页 |
| 3.3.5.1 比旋光度([α]_D~(25))分析 | 第51页 |
| 3.3.5.2 质谱分析 | 第51-53页 |
| 3.3.5.3 红外光谱分析 | 第53-54页 |
| 3.3.5.4 NMR谱分析 | 第54-58页 |
| 3.4 本章小结 | 第58-60页 |
| 第四章 壳寡糖及其衍生物对神经细胞的保护作用 | 第60-78页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第61页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第61页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第61页 |
| 4.2 实验方法 | 第61-65页 |
| 4.2.1 PC-12细胞的体外培养 | 第61-62页 |
| 4.2.1.1 PC-12细胞的培养条件 | 第61-62页 |
| 4.2.1.2 PC-12细胞的复苏 | 第62页 |
| 4.2.1.3 PC-12细胞的传代 | 第62页 |
| 4.2.1.4 PC-12细胞的冻存 | 第62页 |
| 4.2.2 样品细胞毒性测定 | 第62-63页 |
| 4.2.3 氯化铜损伤模型的建立 | 第63页 |
| 4.2.4 谷氨酸损伤模型的建立 | 第63页 |
| 4.2.5 样品对氯化铜诱导细胞损伤的保护作用 | 第63-64页 |
| 4.2.6 样品对谷氨酸诱导细胞损伤的保护作用 | 第64页 |
| 4.2.7 LDH、ROS、MMP指标测定 | 第64-65页 |
| 4.2.8 全乙酰壳寡糖单体低剂量活性筛选 | 第65页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第65-76页 |
| 4.3.1 样品细胞毒性测定 | 第65-66页 |
| 4.3.2 氯化铜损伤模型的建立 | 第66-68页 |
| 4.3.3 谷氨酸损伤模型的建立 | 第68-70页 |
| 4.3.4 样品对氯化铜诱导细胞损伤的保护作用 | 第70-71页 |
| 4.3.5 样品对谷氨酸诱导细胞损伤的保护作用 | 第71-72页 |
| 4.3.6 LDH、ROS、MMP测定 | 第72-75页 |
| 4.3.7 全乙酰壳寡糖单体低剂量活性筛选 | 第75-76页 |
| 4.4 本章小结 | 第76-78页 |
| 结论与创新点 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-87页 |
| 附图 | 第87-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 发表论文 | 第104页 |
| 个人简历 | 第104页 |
