| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略词(ABBREVIATION) | 第13-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-42页 |
| 1.1 抗菌肽研究进展 | 第15-28页 |
| 1.1.1 理化特征 | 第15-16页 |
| 1.1.2 结构分类 | 第16-17页 |
| 1.1.3 抗菌机制研究 | 第17-22页 |
| 1.1.4 抗病毒机制研究 | 第22-25页 |
| 1.1.5 外源表达与应用 | 第25-28页 |
| 1.2 α 螺旋抗菌肽 | 第28-34页 |
| 1.2.1 非脊椎动物 α 螺旋抗菌肽 | 第29-31页 |
| 1.2.2 鱼类 α 螺旋抗菌肽 | 第31-32页 |
| 1.2.3 两栖动物 α 螺旋抗菌肽 | 第32-34页 |
| 1.2.4 哺乳动物 α 螺旋抗菌肽 | 第34页 |
| 1.3 防御素研究进展 | 第34-42页 |
| 1.3.1 分类与命名 | 第34-35页 |
| 1.3.2 鉴定历史 | 第35-36页 |
| 1.3.3 对细菌的抑制作用 | 第36-37页 |
| 1.3.4 对艾滋病病毒的抑制作用 | 第37-38页 |
| 1.3.5 对炭疽杆菌致死因子的抑制作用 | 第38页 |
| 1.3.6 结构-功能活性研究 | 第38-42页 |
| 第2章 α 螺旋抗菌肽对猪源病原菌的抗菌活性及作用机制研究 | 第42-62页 |
| 2.1 研究目的与意义 | 第42-43页 |
| 2.2 材料与方法 | 第43-46页 |
| 2.2.1 菌株 | 第43页 |
| 2.2.2 抗菌肽与抗生素 | 第43页 |
| 2.2.3 主要生化试剂 | 第43-44页 |
| 2.2.4 培养基的配制 | 第44页 |
| 2.2.5 细菌培养 | 第44页 |
| 2.2.6 抑菌试验 | 第44-45页 |
| 2.2.7 细菌的疏水性试验 | 第45页 |
| 2.2.8 细菌的电泳试验 | 第45页 |
| 2.2.9 透射电子显微镜样品准备及观察 | 第45-46页 |
| 2.2.10 扫描电子显微镜样品准备及观察 | 第46页 |
| 2.2.11 原子力显微镜样品准备及观察 | 第46页 |
| 2.3 结果与分析 | 第46-57页 |
| 2.3.1 Ceropin B和moricin的结构特征 | 第46-48页 |
| 2.3.2 Cecropin B和moricin的抗菌活性 | 第48页 |
| 2.3.3 Cecropin B和moricin对副猪嗜血杆菌的杀菌曲线 | 第48-49页 |
| 2.3.4 Cecropin B和moricin的溶血活性 | 第49-50页 |
| 2.3.5 Cecropin B和moricin对不同浓度细菌的抗菌活性试验 | 第50-51页 |
| 2.3.6 透射电子显微镜下观察抗菌肽对副猪嗜血杆菌形态的影响 | 第51-52页 |
| 2.3.7 Cecropin B对标准血清型副猪嗜血杆菌及临床分离菌株的抗菌活性 | 第52-53页 |
| 2.3.8 副猪嗜血杆菌标准菌株的疏水性和电荷性 | 第53-55页 |
| 2.3.9 副猪嗜血杆菌的疏水性、电荷性与对cecropin B敏感性之间的关系 | 第55页 |
| 2.3.10 扫描电子显微镜下观察cecropin B对副猪嗜血杆菌形态的影响 | 第55-57页 |
| 2.3.11 原子力显微镜下观察cecropin B对副猪嗜血杆菌形态的影响 | 第57页 |
| 2.4 讨论 | 第57-60页 |
| 2.4.1 Cecropin B和moricin的结构与功能关系 | 第57-58页 |
| 2.4.2 Cecropin B和moricin的抗菌活性及安全性 | 第58页 |
| 2.4.3 透射电子显微镜结果揭示cecropin B和moricin的作用机制 | 第58-59页 |
| 2.4.4 Cecropin B对不同血清型副猪嗜血杆菌的抗菌活性 | 第59-60页 |
| 2.4.5 副猪嗜血杆菌疏水性、电荷性与对cecropin B敏感性之间的关系 | 第60页 |
| 2.4.6 扫描电子显微镜和原子力显微镜结果揭示的cecropin B作用机制 | 第60页 |
| 2.5 小结 | 第60-62页 |
| 第3章 α 螺旋抗菌肽对猪源病毒的抗病毒活性及作用机制研究 | 第62-75页 |
| 3.1 研究目的与意义 | 第62页 |
| 3.2 材料与方法 | 第62-65页 |
| 3.2.1 毒株与细胞 | 第62-63页 |
| 3.2.2 抗菌肽与试剂 | 第63页 |
| 3.2.3 培养基与溶液的配制 | 第63-64页 |
| 3.2.4 实验动物 | 第64页 |
| 3.2.5 细胞活力测定 | 第64页 |
| 3.2.6 抗菌肽的抗病毒活性试验 | 第64页 |
| 3.2.7 抗菌肽的作用阶段试验 | 第64-65页 |
| 3.2.8 抗菌肽对细胞凋亡的影响 | 第65页 |
| 3.2.9 抗菌肽对伪狂犬病毒感染小鼠的保护性试验 | 第65页 |
| 3.3 结果与分析 | 第65-71页 |
| 3.3.1 抗菌肽对五种病毒的抑制作用分析 | 第65-66页 |
| 3.3.2 抗菌肽对细胞的安全浓度测定 | 第66-67页 |
| 3.3.3 抗菌肽对伪狂犬病毒不同毒株的抗病毒活性 | 第67-68页 |
| 3.3.4 抗菌肽直接作用于伪狂犬病毒 | 第68-70页 |
| 3.3.5 抗菌肽可抑制伪狂犬病毒引起的细胞凋亡 | 第70-71页 |
| 3.3.6 抗菌肽对小鼠的保护作用 | 第71页 |
| 3.4 讨论 | 第71-74页 |
| 3.4.1 抗菌肽的抗病毒活性 | 第71-72页 |
| 3.4.2 抗菌肽对不同毒株的作用 | 第72页 |
| 3.4.3 抗菌肽对伪狂犬病毒复制阶段的影响 | 第72-73页 |
| 3.4.4 抗菌肽对细胞凋亡的影响 | 第73页 |
| 3.4.5 抗菌肽对伪狂犬病毒感染小鼠的保护作用 | 第73-74页 |
| 3.5 小结 | 第74-75页 |
| 第4章 HNP4的结构功能关系研究 | 第75-93页 |
| 4.1 研究目的与意义 | 第75页 |
| 4.2 材料与方法 | 第75-79页 |
| 4.2.1 试剂与溶液 | 第75-76页 |
| 4.2.2 菌株与实验仪器 | 第76页 |
| 4.2.3 多肽合成 | 第76-77页 |
| 4.2.4 LF催化底物合成 | 第77页 |
| 4.2.5 氟化氢切割 | 第77页 |
| 4.2.6 多肽折叠 | 第77-78页 |
| 4.2.7 多肽纯化 | 第78页 |
| 4.2.8 多肽定量 | 第78页 |
| 4.2.9 LF酶活力抑制试验 | 第78页 |
| 4.2.10 虚拟菌落计数试验 | 第78-79页 |
| 4.2.11 表面等离子共振试验 | 第79页 |
| 4.3 结果与分析 | 第79-89页 |
| 4.3.1 HNP4突变体合成及鉴定 | 第79-81页 |
| 4.3.2 HNP4突变体对LF的结合强弱分析 | 第81-82页 |
| 4.3.3 HNP4突变体对LF酶活性的抑制作用 | 第82-83页 |
| 4.3.4 HNP4突变体对E. coli和S. aureus的抗菌活性 | 第83-86页 |
| 4.3.5 HNP4突变体对gp120的结合作用 | 第86-87页 |
| 4.3.6 MeLeu20-HNP4与HNP4之间的结合作用 | 第87页 |
| 4.3.7 二聚对HNP4抗菌活性的影响 | 第87-88页 |
| 4.3.8 二聚对HNP4抑制LF活性的影响。 | 第88-89页 |
| 4.3.9 二聚对HNP4结合gp120活性的影响 | 第89页 |
| 4.4 讨论 | 第89-92页 |
| 4.4.1 阳离子氨基酸对HNP4功能活性的影响 | 第89-90页 |
| 4.4.2 疏水性氨基酸对HNP4功能活性的影响 | 第90-91页 |
| 4.4.3 二聚对HNP4功能活性的影响 | 第91-92页 |
| 4.5 小结 | 第92-93页 |
| 第5章 全文总结及展望 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-118页 |
| 附录 | 第118-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
