| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩写词 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-22页 |
| 1.1 植物ROS研究进展 | 第12-18页 |
| 1.1.1 植物细胞ROS的产生 | 第12-15页 |
| 1.1.2 植物细胞ROS的清除 | 第15页 |
| 1.1.3 ROS的检测 | 第15-17页 |
| 1.1.4 植物细胞ROS信号转导研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2 植物盐胁迫应答机制研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.1 盐胁迫下线粒体中ROS应答 | 第18页 |
| 1.2.2 盐胁迫对线粒体电子传递链（ETC）的影响 | 第18-19页 |
| 1.3 Ca~(2+)信号在胁迫应答中的功能研究进展 | 第19-21页 |
| 1.3.1 ROS信号与钙信号的关系 | 第19-20页 |
| 1.3.2 线粒体中钙信号的测定 | 第20-21页 |
| 1.4 立题意义和依据 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.2 实验试剂 | 第22页 |
| 2.3 实验设备 | 第22-23页 |
| 2.4 实验溶液和培养基 | 第23-24页 |
| 2.4.1 常用溶液 | 第23页 |
| 2.4.2 常用培养基 | 第23-24页 |
| 2.5 实验方法 | 第24-32页 |
| 2.5.1 拟南芥种植方法 | 第24页 |
| 2.5.2 拟南芥的杂交实验 | 第24-25页 |
| 2.5.3 拟南芥基因组DNA的提取 | 第25页 |
| 2.5.4 农杆菌介导的拟南芥重组质粒转化 | 第25-26页 |
| 2.5.5 拟南芥RNA提取 (Trizol法) | 第26页 |
| 2.5.6 cDNA的获得 | 第26-27页 |
| 2.5.7 荧光定量PCR反应 | 第27-28页 |
| 2.5.8 拟南芥T-DNA插入纯合体鉴定 | 第28-29页 |
| 2.5.9 拟南芥叶肉细胞原生质体的分离 | 第29页 |
| 2.5.10 线粒体定位 | 第29-30页 |
| 2.5.11 DAB染色 | 第30-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-48页 |
| 3.1 不同亚细胞定位的cpYFP转基因植株的构建与检测 | 第32-36页 |
| 3.1.1 胞质定位cpYFP | 第32-33页 |
| 3.1.2 叶绿体定位cpYFP | 第33页 |
| 3.1.3 线粒体定位cpYFP | 第33-35页 |
| 3.1.4 ROS的清除 | 第35-36页 |
| 3.2 NaCl诱导线粒体O_2~(.-)产生 | 第36-40页 |
| 3.2.1 不同试剂对根尖线粒体O_2~(.-)的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.2 外源NaCl刺激下根尖细胞线粒体O_2~(.-)动态变化 | 第37-38页 |
| 3.2.3 外源NaCl刺激下叶肉细胞线粒体ROS动态变化 | 第38-40页 |
| 3.3 NaCl诱导线粒体O_2~(.-)产生机制分析 | 第40-42页 |
| 3.4 ETC抑制剂处理后盐胁迫下氧化还原有关基因的表达 | 第42-44页 |
| 3.5 NaCl处理前后WT和突变体的荧光变化 | 第44-45页 |
| 3.6 Ca~(2+)信号在NaCl处理诱导线粒体O_2~(.-)产生中的作用 | 第45-48页 |
| 3.6.1 EGTA孵育后NaCl诱导MCP根尖线粒体O_2~(.-)荧光变化 | 第45-46页 |
| 3.6.2 NaCl处理诱导线粒体Ca~(2+)产生 | 第46-47页 |
| 3.6.3 Antimycin A孵育后NaCl诱导根尖线粒体Ca~(2+)产生 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 4.1 线粒体中ROS的产生 | 第48页 |
| 4.2 线粒体功能和盐胁迫应答 | 第48-49页 |
| 4.3 Ca~(2+)信号在NaCl处理诱导线粒体O_2~(.-)产生中的作用分析 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附件 | 第60页 |
