| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-15页 |
| 第2章 材料与方法 | 第15-32页 |
| 2.1 研究对象 | 第15页 |
| 2.1.1 本次实验共收集收集25例 | 第15页 |
| 2.1.2 细胞购买及siRNA设计 | 第15页 |
| 2.2 实验分组 | 第15页 |
| 2.3 主要仪器及试剂 | 第15-17页 |
| 2.3.1 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.3.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.4 主要溶液配制 | 第17-19页 |
| 2.4.1 H&E染液配置 | 第17页 |
| 2.4.2 Trizol | 第17页 |
| 2.4.3 琼脂糖凝胶电泳用液 | 第17-18页 |
| 2.4.4 培养基的配置 | 第18页 |
| 2.4.5 MTT试剂的配制 | 第18页 |
| 2.4.6 western电泳液配置 | 第18页 |
| 2.4.7 western电转液配置 | 第18页 |
| 2.4.8 Tris Buff Solution(TBS)(10×)配置 | 第18页 |
| 2.4.9 分离胶的配置 | 第18-19页 |
| 2.4.10 浓缩胶的配置 | 第19页 |
| 2.5 实验方法 | 第19-32页 |
| 2.5.1 标本的收集与保存 | 第19页 |
| 2.5.2 前列腺癌组织与癌旁非癌组织的鉴定及分离 | 第19-20页 |
| 2.5.3 Trizol多步法提取前列腺癌组织及癌旁非癌正常组织的总RNA | 第20-21页 |
| 2.5.4 RNA浓度测定 | 第21页 |
| 2.5.5 引物设计 | 第21页 |
| 2.5.6 逆转录cDNA | 第21-22页 |
| 2.5.7 Real-time PCR检测lnc RNA RP13-650J16.1 的表达水平 | 第22-23页 |
| 2.5.8 琼脂糖凝胶电泳鉴定RT-PCR产物 | 第23页 |
| 2.5.9 细胞培养 | 第23-24页 |
| 2.5.10 细胞转染 | 第24-25页 |
| 2.5.11 划痕实验检测RP13-650J16.1 对DU145，22RV1细胞的影响 | 第25页 |
| 2.5.12 平板克隆实验检测RP13-650J16.1 对DU145，22RV1细胞的影响 | 第25-26页 |
| 2.5.13 MTT法检测RP13-650J16.1 对DU145，22RV1细胞的影响 | 第26-27页 |
| 2.5.14 Transwell检测RP13-650J16.1 对DU145，22RV1细胞侵袭能力的影响 | 第27-28页 |
| 2.5.15 western blot检测下游相关蛋白表达变化 | 第28-32页 |
| 第3章 结果 | 第32-45页 |
| 3.1 前列腺癌组织中癌症相关lnc RNA分子的筛选 | 第32-34页 |
| 3.2 组织中癌组织与癌旁非癌组织病理鉴定 | 第34-36页 |
| 3.3 RT-PCR对RP13650J16.1 大样本进行验证 | 第36-38页 |
| 3.4 siRNA干扰的22RV1及DU145细胞系的鉴定 | 第38-39页 |
| 3.5 LncRNA RP13-650H161对细胞生物学功能的影响 | 第39-44页 |
| 3.6 siRNA干扰后对下游RAC3基因及下游蛋白的影响 | 第44-45页 |
| 第4章 讨论 | 第45-51页 |
| 4.1 LncRNA RP13-650J16.1 在前列腺癌中的异常表达及与前列腺癌相关因素分析 | 第45-47页 |
| 4.2 LncRNA RP13-650J16.1 对前列腺癌细胞系生物学行为的影响 | 第47-48页 |
| 4.3 LncRNA RP13-650J16.1 对下游相关蛋白的影响 | 第48-51页 |
| 第5章 结论 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 综述 LncRNA在前列腺癌中的研究进展 | 第57-67页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
