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SOCS3对IgA肾病小鼠肾脏损害的影响及机制探讨

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
中英文缩略词表第10-11页
第1章 引言第11-14页
第2章 材料与方法第14-27页
    2.1 材料第14-16页
        2.1.1 实验动物及饲养环境第14页
        2.1.2 主要试剂和材料第14-15页
        2.1.3 主要仪器耗材及设备第15页
        2.1.4 主要溶液配制第15-16页
    2.2 方法第16-26页
        2.2.1 建立IgA肾病小鼠模型第16页
        2.2.2 慢病毒转染第16-17页
        2.2.3 实验分组第17页
        2.2.4 小鼠的一般情况及标本的处理第17-18页
        2.2.5 肾脏病理组织第18-20页
        2.2.6 Weston-blot检测肾脏组织蛋白第20-22页
        2.2.7 实时荧光定量PCR检测mRNA第22-25页
        2.2.8 ELISA检测血清IgA水平第25-26页
    2.3 数据分析与统计学分析第26-27页
第3章 结果第27-39页
    3.1 构建高表达SOCS3的IgAN小鼠模型第27页
    3.2 小鼠血生化结果第27-29页
    3.3 小鼠肾脏病理比较第29-30页
        3.3.1 光镜下病理变化第29页
        3.3.2 小鼠肾脏Katafuchi评分结果第29-30页
    3.4 小鼠肾脏IgA免疫荧光沉积第30-31页
    3.5 免疫组化法检测小鼠肾脏SOCS3、TLR4、MCP-1、TGF-β1 的表达及定位第31-34页
        3.5.1 小鼠肾脏SOCS3的表达第31页
        3.5.2 小鼠肾脏TLR4的表达第31-32页
        3.5.3 小鼠肾脏MCP-1 的表达第32-33页
        3.5.4 小鼠肾脏TGF-β1 的表达第33-34页
    3.6 Western-blotting检测小鼠肾皮质SOCS3、TLR4、MCP-1、TGF-β1 的表达第34-36页
    3.7 RT-PCR检测小鼠肾皮质SOCS3、TLR4、MCP-1、TGF-β1 的mRNA表达第36-37页
    3.8 ELISA检测血清Ig A的水平第37-39页
第4章 讨论第39-42页
    4.1 实验室IgAN小鼠模型的构建第39页
    4.2 TLR4与IgAN肾组织损伤第39-40页
    4.3 上调SOCS3在IgAN小鼠TLR4信号通路的调控作用第40-42页
第5章 结论第42-43页
    5.1 结论第42页
    5.2 不足之处与展望第42-43页
致谢第43-44页
参考文献第44-47页
综述第47-51页
    参考文献第50-51页

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