| 摘要 | 第3-8页 |
| ABSTRACT | 第8-13页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 第一章 LPS对胼胝体内炎症因子及其受体表达的影响 | 第20-35页 |
| 1. 实验目的 | 第20页 |
| 2. 实验动物及材料 | 第20-22页 |
| 2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.3 试剂准备 | 第21-22页 |
| 3. 实验方法 | 第22-27页 |
| 3.1 最佳模型制作 | 第22-23页 |
| 3.2 LPS对脑胼胝体内IL-1β及IL-1R_1表达的影响 | 第23-27页 |
| 3.4 统计方法 | 第27页 |
| 4. 实验结果 | 第27-34页 |
| 4.1 模型筛选结果 | 第27-28页 |
| 4.2 LPS对脑胼胝体内IL-1β表达的影响 | 第28-31页 |
| 4.3 LPS对脑胼胝体内IL-1R_1表达的影响 | 第31-34页 |
| 5. 讨论 | 第34页 |
| 6. 结论 | 第34-35页 |
| 第二章 脓毒症模型对OPCs凋亡及增殖及分化的影响 | 第35-51页 |
| 1. 实验目的 | 第35页 |
| 2. 实验动物及材料 | 第35-36页 |
| 2.1 实验动物 | 第35页 |
| 2.2 实验材料 | 第35-36页 |
| 3. 实验方法 | 第36-40页 |
| 3.1 探讨LPS对胼胝体内OPCs凋亡的影响 | 第36页 |
| 3.2 探讨LPS对胼胝体内OPCs增殖的影响 | 第36页 |
| 3.3 免疫荧光法检测NG2、PDGFRα、MBP、CNPse的表达情况 | 第36-37页 |
| 3.4 WB检测LPS对脑胼胝体内NG2、PDGFRα、MBP、CNPase、Olig1、Olig2的表达情况 | 第37-39页 |
| 3.5 RT-PCR法检测LPS对脑胼胝体Olig1、Olig2、Nkx2.2、Tcf4、Axin | 第39-40页 |
| 3.6 统计方法 | 第40页 |
| 4. 实验结果 | 第40-49页 |
| 4.1 LPS注射后各时间点OPCs细胞的凋亡情况 | 第40-42页 |
| 4.2 LPS注射后各时间点OPCs细胞的增殖情况 | 第42-43页 |
| 4.3 免疫荧光检测NG2、PDGFRα的表达 | 第43-46页 |
| 4.4 MBP及CNPse的表达 | 第46-47页 |
| 4.5 Olig1、Olig2、Nkx2.2、Tcf4、Axin2的表达 | 第47-49页 |
| 5. 讨论 | 第49-51页 |
| 6. 结论 | 第51页 |
| 第三章 脓毒症模型对胼胝体内轴突髓鞘化的影响 | 第51-55页 |
| 1. 目的 | 第51页 |
| 2. 实验试剂及材料 | 第51-52页 |
| 2.1 实验动物 | 第51页 |
| 2.2 实验材料 | 第51-52页 |
| 3. 实验方法 | 第52-53页 |
| 3.1 标本留取 | 第52页 |
| 3.2 统计方法 | 第52-53页 |
| 4. 实验结果 | 第53-54页 |
| 4.1 脓毒症模型对胼胝体内轴突髓鞘化的影响 | 第53-54页 |
| 5. 讨论 | 第54页 |
| 6. 结论 | 第54-55页 |
| 第四章 IL-1β对OPCs凋亡与增殖及分化的影响 | 第55-65页 |
| 1. 实验目的 | 第55页 |
| 2. 实验试剂及材料 | 第55-56页 |
| 2.1 实验动物 | 第55页 |
| 2.2 实验试剂 | 第55-56页 |
| 3. 实验方法 | 第56-59页 |
| 3.1 OPCs细胞的获取 | 第56-57页 |
| 3.2 免疫荧光检测OPCs的增殖与凋亡情况及细胞鉴定 | 第57页 |
| 3.4 免疫荧光检测OPCs的分化情况及细胞鉴定 | 第57-58页 |
| 3.5 WB检测NG2、PDGFRα、MBP、CNPase、Olig1、Olig2表达 | 第58-59页 |
| 4. 实验结果 | 第59-64页 |
| 4.1 IL-1β对OPCs凋亡的影响 | 第60-61页 |
| 4.2 IL-1β对OPCs增殖的影响 | 第61-62页 |
| 4.3 免疫荧光检测NG2及MBP的表达及细胞鉴定 | 第62-64页 |
| 5. 讨论 | 第64-65页 |
| 6. 结论 | 第65页 |
| 第五章 IL-1β对FYN-MEK-ERK通路的影响及两者调控OPCs分化的关系 | 第65-73页 |
| 1. 实验目的 | 第65页 |
| 2. 实验试剂及材料 | 第65-66页 |
| 3. 实验方法 | 第66-69页 |
| 3.1 OPCs细胞的获取 | 第66-67页 |
| 3.2 质粒转染 | 第67页 |
| 3.3 WB检测NG2、PDGFRα、MBP、CNPase、Olig1、Olig2、磷酸化FYN、磷酸化MEK、磷酸化ERK的表达 | 第67-69页 |
| 4. 实验结果 | 第69-71页 |
| 4.1 IL-1β对FYN-MEK-ERK通路的影响 | 第69-70页 |
| 4.2 IL-1β与ERK通道在调控OPCs分化中的关系 | 第70-71页 |
| 5. 讨论 | 第71-72页 |
| 6. 结论 | 第72-73页 |
| 全文总结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-79页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
