| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第7-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-26页 |
| 1.1 概述 | 第11-13页 |
| 1.2 MMP的结构、分类和功能 | 第13-17页 |
| 1.3 MMPs的三级结构 | 第17-20页 |
| 1.4 MMPs的生物活性分子调节 | 第20-21页 |
| 1.5 MMPs的伤口愈合机制 | 第21-22页 |
| 1.6 MMPs的研究现状 | 第22-23页 |
| 1.7 本研究基因的现状、目的及意义 | 第23-26页 |
| 第2章 三角帆蚌基质金属蛋白酶MMP1，19 基因克隆及原核表达 | 第26-88页 |
| 2.1 前言 | 第26-27页 |
| 2.2 材料与方法 | 第27-47页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.2.2 菌株和质粒 | 第27页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第27-28页 |
| 2.2.4 主要试剂盒 | 第28页 |
| 2.2.5 主要仪器设备 | 第28-29页 |
| 2.2.6 总RNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.2.7 三角帆蚌SMART cDNA的合成 | 第30-32页 |
| 2.2.8 HcMMP1基因和HcMMP19基因的克隆 | 第32-35页 |
| 2.2.9 HcMMPs基因的生物信息学分析 | 第35-37页 |
| 2.2.10 HcMMP1和Hc MMP19基因在三角帆蚌不用组织中的表达 | 第37-38页 |
| 2.2.11 嗜水气单胞菌和肽聚糖刺激后HcMMP1和HcMMP19基因的表达 | 第38-39页 |
| 2.2.12 建立三角帆蚌损伤模型 | 第39-40页 |
| 2.2.13 利用RT- PCR技术检测表达变化 | 第40-41页 |
| 2.2.14 MMP1基因和MMP19基因的原核表达 | 第41-47页 |
| 2.3 实验结果 | 第47-84页 |
| 2.3.1 三角帆蚌的总RNA | 第47-48页 |
| 2.3.2 HcMMP1和HcMMP19基因的cDNA全长克隆 | 第48-50页 |
| 2.3.3 HcMMP1和HcMMP19基因cDNA全长序列及推导的氨基酸序列. | 第50-55页 |
| 2.3.4 MMPs基因序列的生物信息学分析 | 第55-63页 |
| 2.3.5 推导MMPs氨基酸序列的同源性比对 | 第63-67页 |
| 2.3.6 HcMMPs基因的系统进化树 | 第67-68页 |
| 2.3.7 HcMMP1和HcMMP19基因的定量表达 | 第68-80页 |
| 2.3.8 HcMMPs基因的重组质粒的构建及在大肠杆菌中的表达及纯化 | 第80-83页 |
| 2.3.9 重组MMP19蛋白浓度测定 | 第83-84页 |
| 2.4 讨论 | 第84-88页 |
| 第3章 结论与展望 | 第88-91页 |
| 3.1 结论 | 第88-89页 |
| 3.2 展望 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-104页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第104页 |
