| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-20页 |
| 1 转基因作物的发展及贡献 | 第12-13页 |
| 1.1 转基因农作物 | 第12页 |
| 1.2 转基因农作物的应用 | 第12页 |
| 1.3 转基因农作物的贡献 | 第12-13页 |
| 1.4 转WYMV-Nib8基因抗黄花叶病毒病小麦N12-1的简介 | 第13页 |
| 2 转基因农作物的潜在风险 | 第13-14页 |
| 2.1 转基因农作物是否会危害土壤生物群落多样性 | 第13-14页 |
| 2.2 转基因农作物是否会产生富集危害 | 第14页 |
| 2.3 转基因农作物是否会导致“基因漂移”的发生 | 第14页 |
| 2.4 转基因农作物是否会威胁生态系统 | 第14页 |
| 3 转基因农作物根际土壤生态系统的安全性评价 | 第14-17页 |
| 3.1 转基因农作物根际土壤生态系统安全性评价的必要性 | 第15页 |
| 3.2 土壤理化性质的研究 | 第15-16页 |
| 3.3 土壤酶活性的研究 | 第16-17页 |
| 3.4 土壤微生物群落多样性的研究 | 第17页 |
| 4 本研究的意义、研究目标及研究内容 | 第17-20页 |
| 4.1 研究意义 | 第17-18页 |
| 4.2 研究目标 | 第18页 |
| 4.3 研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章 小麦根际土壤理化性质的测定 | 第20-32页 |
| 1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 1.1 材料 | 第20-23页 |
| 1.1.1 土壤样品 | 第20-22页 |
| 1.1.2 主要仪器与设备 | 第22页 |
| 1.1.3 土壤样品采集点的设计方案 | 第22页 |
| 1.1.4 采集点的确定 | 第22-23页 |
| 1.1.5 土壤样品的预处理 | 第23页 |
| 2 小麦根际土壤理化性质的检测 | 第23-32页 |
| 2.1 试剂与方法 | 第23-28页 |
| 2.1.1 小麦根际土壤pH测定方法 | 第23-24页 |
| 2.1.2 小麦根际土壤含水量测定方法 | 第24页 |
| 2.1.3 小麦根际土壤碱解氮含量测定方法 | 第24-25页 |
| 2.1.4 小麦根际土壤速效磷含量测定方法 | 第25-26页 |
| 2.1.5 小麦根际土壤速效钾含量测定方法 | 第26-27页 |
| 2.1.6 小麦根际土壤有机质含量测定方法 | 第27-28页 |
| 2.2 结果 | 第28-31页 |
| 2.2.1 江苏六合与河南新乡2011-2012年土壤pH测定结果 | 第28页 |
| 2.2.2 江苏六合与河南新乡2011-2012年土壤含水量测定结果 | 第28-29页 |
| 2.2.3 江苏六合与河南新乡2011-2012年土壤碱解氮含量测定结果 | 第29页 |
| 2.2.4 江苏六合与河南新乡2011-2012年土壤速效磷测定结果 | 第29-30页 |
| 2.2.5 江苏六合与河南新乡2011-2012年土壤速效钾测定结果 | 第30页 |
| 2.2.6 江苏六合与河南新乡2011-2012年土壤有机质测定结果 | 第30-31页 |
| 2.3 讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 小麦根际土壤酶活性的测定 | 第32-52页 |
| 1 材料与方法 | 第32-38页 |
| 1.1 材料 | 第32-33页 |
| 1.1.1 土壤样品 | 第32-33页 |
| 1.1.2 主要仪器与设备 | 第33页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第33页 |
| 1.2 试验方法 | 第33-38页 |
| 1.2.1 小麦根际土壤脲酶测定方法 | 第33-34页 |
| 1.2.2 小麦根际土壤蔗糖酶活性测定方法 | 第34-35页 |
| 1.2.2.1 主要试剂 | 第34-35页 |
| 1.2.2.2 主要仪器与设备 | 第35页 |
| 1.2.2.3 试验步骤 | 第35页 |
| 1.2.2.4 数据分析 | 第35页 |
| 1.2.3 小麦根际土壤脱氢酶活性测定方法的优化与确立 | 第35-38页 |
| 2 结果 | 第38-48页 |
| 2.1 小麦根际土壤脲酶活性测定结果 | 第38-40页 |
| 2.1.1 江苏六合小麦根际土壤脲酶活性测定结果 | 第38-39页 |
| 2.1.2 河南新乡小麦根际土壤脲酶活性测定结果 | 第39-40页 |
| 2.2 小麦根际土壤蔗糖酶活性测定结果 | 第40-42页 |
| 2.2.1 江苏六合小麦根际土壤蔗糖酶活性测定结果 | 第40-41页 |
| 2.2.2 河南新乡小麦根际土壤蔗糖酶活性测定结果 | 第41-42页 |
| 2.3 小麦根际土壤脱氢酶活性测定方法优化与方法确立 | 第42-48页 |
| 2.3.1 萃取剂选择试验结果 | 第42页 |
| 2.3.2 标准曲线确立结果 | 第42-43页 |
| 2.3.3 波长选择试验结果 | 第43-44页 |
| 2.3.4 对照设置试验结果 | 第44-45页 |
| 2.3.5 培养时间确立试验结果 | 第45页 |
| 2.3.6 基质浓度确立试验结果 | 第45-46页 |
| 2.3.7 小麦根际土壤脱氢酶活性测定结果 | 第46-48页 |
| 3 讨论 | 第48-52页 |
| 第四章 PCR-DGGE方法对小麦根际土壤微生物群落多样性分析 | 第52-80页 |
| 1 材料与方法 | 第52-55页 |
| 1.1 材料 | 第52页 |
| 1.2 主要试剂 | 第52-53页 |
| 1.3 主要仪器 | 第53页 |
| 1.4 方法 | 第53-55页 |
| 1.4.1 土壤总DNA提取 | 第53页 |
| 1.4.2 PCR的扩增条件 | 第53-54页 |
| 1.4.3 DGGE条件及染色 | 第54页 |
| 1.4.4 DGGE结果的软件分析 | 第54-55页 |
| 2 结果 | 第55-79页 |
| 2.1 2010-2011年度江苏六合小麦根际土壤微生物群落变化DGGE分析 | 第55-61页 |
| 2.1.1 细菌群落 | 第55-57页 |
| 2.1.2 真菌群落 | 第57-61页 |
| 2.2 2010-2011年度河南新乡小麦根际土壤微生物群落变化DGGE分析 | 第61-67页 |
| 2.2.1 细菌群落 | 第61-63页 |
| 2.2.2 真菌群落 | 第63-67页 |
| 2.3 2011-2012年度江苏六合小麦根际土壤微生物群落变化DGGE分析 | 第67-73页 |
| 2.3.1 细菌群落 | 第67-69页 |
| 2.3.2 真菌群落 | 第69-73页 |
| 2.4 2011-2012年度河南新乡小麦根际土壤微生物群落变化DGGE分析 | 第73-79页 |
| 2.4.1 细菌群落 | 第73-75页 |
| 2.4.2 真菌群落 | 第75-79页 |
| 3 讨论 | 第79-80页 |
| 全文总结 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-86页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第86-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
