| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词及英汉对照 | 第6-11页 |
| 1 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 拟南芥根系发育 | 第11页 |
| 1.2 拟南芥根尖干细胞微环境的建立与维持 | 第11-16页 |
| 1.2.1 拟南芥根尖干细胞微环境的组成 | 第11-12页 |
| 1.2.2 拟南芥根尖干细胞微环境的维持 | 第12-15页 |
| 1.2.3 小G蛋白Rac/ROP GTPase在根尖干细胞微环境维持中的作用 | 第15-16页 |
| 1.3 生长素在拟南芥根系发育中的作用 | 第16-18页 |
| 1.4 研究的目的与意义 | 第18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-29页 |
| 2.1 植物材料与生长条件 | 第18-19页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第19页 |
| 2.3 常用试剂及其配制 | 第19-22页 |
| 2.3.1 常用试剂 | 第19-20页 |
| 2.3.2 植物基因组DNA提取溶液 | 第20页 |
| 2.3.3 HCG的配制 | 第20页 |
| 2.3.4 植物MS培养基的配制 | 第20-21页 |
| 2.3.5 EMS诱变处理液的配制 | 第21页 |
| 2.3.6 GUS染色液的配制： | 第21-22页 |
| 2.4 试验方法 | 第22-24页 |
| 2.4.1 拟南芥种子的无菌播种与培养 | 第22页 |
| 2.4.2 土壤培养拟南芥 | 第22页 |
| 2.4.3 拟南芥幼苗GUS染色 | 第22-23页 |
| 2.4.4 淀粉粒染色观察 | 第23页 |
| 2.4.5 拟南芥幼苗根生长分析 | 第23页 |
| 2.4.6 拟南芥幼苗侧根生长分析 | 第23页 |
| 2.4.7 拟南芥遗传杂交实验 | 第23页 |
| 2.4.8 植物材料的荧光显微镜观察 | 第23-24页 |
| 2.4.9 激光共聚焦显微镜观察荧光 | 第24页 |
| 2.4.10 植物材料的解剖镜观察 | 第24页 |
| 2.5 突变体M1代制备 | 第24-25页 |
| 2.5.1 材料 | 第24页 |
| 2.5.2 方法 | 第24-25页 |
| 2.6 突变体M2代的制备 | 第25页 |
| 2.7 突变体M2的筛选与稳定表型突变体株系的获得 | 第25-26页 |
| 2.8 通过回交去除突变体背景 | 第26页 |
| 2.9 图位克隆的粗定位 | 第26-28页 |
| 2.10 图位克隆的精细定位 | 第28页 |
| 2.11 拟南芥基因组DNA的快速提取 | 第28-29页 |
| 2.12 PCR反应体系和反应程序 | 第29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-41页 |
| 3.1 14-2 M-4 突变体表型分析 | 第29-32页 |
| 3.1.1 突变体根系发育表型分析 | 第29-31页 |
| 3.1.2 突变体地上部分表型分析 | 第31-32页 |
| 3.2 14-2 M-4 突变体中QC表达的基因与Cyclin B1;1：GUS的表达受到影响 | 第32-35页 |
| 3.3 14-2 M-4 突变体根中PLT1-YFP和PLT2-YFP的表达受到影响 | 第35-36页 |
| 3.4 14-2 M-4 突变体中SHR和SCR的表达没有变化 | 第36-37页 |
| 3.5 14-2M-4 突变体根中PIN1的极性定位改变 | 第37-38页 |
| 3.6 14-2M-4 突变体根中生长素分布受影响 | 第38-39页 |
| 3.7 图位克隆分析 | 第39-41页 |
| 3.7.1 突变体的遗传学分析 | 第39页 |
| 3.7.2 基因的粗定位 | 第39-40页 |
| 3.7.3 基因的精细定位 | 第40-41页 |
| 4 讨论与结论 | 第41-46页 |
| 4.1 突变基因影响生长素分布 | 第41-44页 |
| 4.2 突变基因影响花器官发育 | 第44-45页 |
| 4.3 待解决的问题 | 第45页 |
| 4.4 结论 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
