首页--医药、卫生论文--中国医学论文--中药学论文--中药药理学论文

三萜皂苷Saxifragifolin D的抗乳腺癌作用及其机制研究

主要缩略词中英文对照表第1-7页
摘要第7-9页
Abstract第9-15页
第一章 前言第15-33页
 一 自噬第15-25页
  (一) 自噬简介第15-18页
  (二) 自噬信号转导通路第18-23页
  (三) 自噬与凋亡的关系第23-24页
  (四) 自噬与凋亡共同的信号分子第24-25页
  (五) 自噬性死亡与肿瘤的治疗第25页
 二 内质网应激第25-31页
  (一) ROS第25-26页
  (二) 内质网应激信号通路第26-27页
  (三) 内质网应激与凋亡的关系第27-30页
  (四) 内质网应激与自噬的关系第30-31页
 三 三 萜皂苷Saxifragifolin D(SD)的研究进展第31-32页
 四 本研究的目的和意义第32-33页
第二章 SD诱导乳腺癌细胞凋亡作用研究第33-56页
 一 研究内容第33页
 二 材料与方法第33-37页
  (一) 细胞株第33页
  (二) 药品及试剂第33-34页
  (三) 实验仪器第34-35页
  (四) 主要试剂配制方法第35-37页
 三 实验方法第37-43页
  (一) 细胞培养第37页
  (二) 细胞体外增殖抑制试验第37-38页
  (三) 细胞形态学观察第38页
  (四) Hoechst 33258染色试验第38页
  (五) 细胞亚显微结构观察第38-39页
  (六) 细胞DNA含量分析第39页
  (七) 细胞凋亡率检测第39页
  (八) 线粒体膜电位检测第39-40页
  (九) Western blot免疫印迹试验第40-42页
  (十) 数据的统计学处理第42-43页
 四 结果第43-54页
  (一) SD 对乳腺癌细胞具有显著的增殖抑制作用第43-44页
  (二) SD 诱导MCF-7和MDA-MB-231细胞形态学变化第44-46页
  (三) SD 诱导乳腺癌细胞凋亡第46-54页
 五 讨论第54-56页
第三章 SD诱导乳腺癌细胞自噬作用研究第56-65页
 一 研究内容第56页
 二 材料与方法第56-57页
  (一) 细胞株第56页
  (二) 药品及试剂第56页
  (三) 实验仪器第56页
  (四) 主要试剂配制方法第56-57页
 三 实验方法第57-58页
  (一) 自噬体观察第57页
  (二) MDC 染色试验第57页
  (三) 细胞自噬率检测第57-58页
  (四) Western blot 免疫印迹方法第58页
  (五) 数据的统计学处理第58页
 四 结果第58-63页
  (一) SD 诱导 MDA-MB-231 细胞产生自噬体第58-59页
  (二) SD 诱导 MDA-MB-231 细胞产生 MDC 染色阳性的自噬体第59-61页
  (三) SD 诱导 MDA-MB-231 细胞自噬率增加第61-62页
  (四) SD 诱导 MCF-7 和 MDA-MB-231 细胞自噬相关蛋白变化第62-63页
 五 讨论第63-65页
第四章 SD 诱导的自噬对乳腺癌细胞凋亡具有促进作用第65-76页
 一 研究内容第65页
 二 材料与方法第65-66页
  (一) 细胞株第65页
  (二) 药品及试剂第65-66页
  (三) 实验仪器第66页
  (四) 主要试剂配制方法第66页
 三 实验方法第66-69页
  (一) RNA 干扰试验第66-67页
  (二) 细胞自噬率检测第67页
  (三) 细胞凋亡率检测第67-68页
  (四) 细胞体外增殖抑制试验第68页
  (五) Western blot 检测 LC3 和 PARP 蛋白的变化第68-69页
  (六) 数据的统计学处理第69页
 四 结果第69-74页
  (一) RNA 干扰降低细胞 Beclin1 表达水平第69页
  (二) BAF 或 Beclin1 siRNA 预处理抑制 SD 诱导的细胞自噬第69-70页
  (三) BAF 或 Beclin1 siRNA 预处理抑制 SD 诱导的细胞凋亡第70-72页
  (四) BAF 或 Beclin1 siRNA 预处理拮抗 SD 的增殖抑制作用第72-73页
  (五) BAF 或 Beclin1 siRNA 预处理抑制 SD 诱导的 LC3 和 PARP 活化第73-74页
 五 讨论第74-76页
第五章 SD 诱导的细胞自噬和凋亡部分依赖于 ROS 介导的内质网应激第76-95页
 一 研究内容第76页
 二 材料与方法第76-77页
  (一) 细胞株第76页
  (二) 药品及试剂第76-77页
  (三) 实验仪器第77页
  (四) 主要试剂配制方法第77页
 三 实验方法第77-81页
  (一) 细胞内质网形态观察第77页
  (二) 细胞内 ROS 检测第77-78页
  (三) 细胞内钙水平检测第78页
  (四) RNA 干扰试验第78-79页
  (五) 细胞自噬率检测第79-80页
  (六) 细胞凋亡率检测第80页
  (七) 细胞体外增殖抑制试验第80页
  (八) Western blot 检测相关蛋白变化第80-81页
  (九) 数据的统计学处理第81页
 四 结果第81-93页
  (一) SD 引起细胞内质网形态变化第81-82页
  (二) SD 引起细胞内 ROS 水平增加第82-83页
  (三) SD 引起细胞内钙离子水平升高第83页
  (四) SD 对 MCF-7 和 MDA-MB-231 细胞内质网应激相关蛋白的影响第83-85页
  (五) RNA 干扰降低 MDA-MB-231 细胞 IRE1α表达水平第85-86页
  (六) TUDCA 或 IRE1α siRNA 预处理抑制 SD 诱导的细胞自噬第86-87页
  (七) TUDCA 或 IRE1α siRNA 预处理抑制 SD 诱导的细胞凋亡第87-88页
  (八) TUDCA 或 IRE1α siRNA 预处理拮抗 SD 的细胞增殖抑制作用第88-89页
  (九) TUDCA 或 IRE1α siRNA 预处理抑制 SD 诱导的 LC3 和 PARP 活化第89-90页
  (十) NAC 预处理抑制 SD 诱导的细胞自噬第90-91页
  (十一)NAC 预处理抑制 SD 诱导的细胞凋亡第91-92页
  (十二)NAC 预处理拮抗 SD 的增殖抑制作用第92页
  (十三)NAC 预处理抑制 SD 诱导的 IRE1α、LC3 和 PARP 蛋白变化第92-93页
 五 讨论第93-95页
第六章 SD 作用前后 MDA-MB-231 细胞的差异蛋白质组学研究第95-110页
 一 本章研究内容第95页
 二 材料与方法第95-97页
  (一) 细胞株第95页
  (二) 实验仪器第95页
  (三) 主要试剂配制方法第95-97页
 三 实验方法第97-99页
  (一) 细胞总蛋白的提取和定量第97-98页
  (二) 一向等电聚焦第98页
  (三) 平衡胶条第98页
  (四) 二向 SDS-PAGE 电泳第98页
  (五) 银染第98页
  (六) 图像扫描与分析第98-99页
  (七) 酶解第99页
  (八) 质谱鉴定第99页
  (九) 差异蛋白质的功能分类和相互作用网络图第99页
  (十) Western Blot验证部分差异蛋白第99页
 四 结果第99-108页
  (一) SD处理MDA-MB-231细胞前后的双向电泳图谱第99-105页
  (二) 质谱鉴定的差异蛋白质功能分类第105页
  (三) 质谱鉴定的差异蛋白质网络关系图第105-106页
  (四) 部分差异蛋白的验证第106-107页
  (五) NAC预处理对SD诱导的氧化还原酶类蛋白表达的影响第107-108页
 五 讨论第108-110页
第七章 全文结论与展望第110-113页
 一 全文结论第110-112页
 二 研究创新点第112页
 三 研究展望第112-113页
参考文献第113-125页
博士期间撰写论文第125-126页
致谢第126页

论文共126页,点击 下载论文
上一篇:ClC-3氯通道和IK1钾通道在细胞容积调节和迁移中的作用
下一篇:糖皮质激素及其受体前调控基因多态性与胎儿发育的关系