| 摘要 | 第4-7页 |
| Aabstract | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第14-18页 |
| 第2章 淫羊藿苷对hFOB1.19成骨细胞的增殖分化及矿化影响 | 第18-36页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第18-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-24页 |
| 2.2.1 主要溶液配制 | 第20页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第20页 |
| 2.2.3 MTT检测细胞增值活性 | 第20-21页 |
| 2.2.4 碱性磷酸酶试剂盒检测 | 第21页 |
| 2.2.5 qRT-PCR检测成骨细胞标志基因BGP﹑I型胶原的mRNA表达 | 第21-22页 |
| 2.2.6 茜素红染色检测成骨细胞钙结节 | 第22页 |
| 2.2.7 ELISA方法检测转化生长因子(TGF-β1)和核转入因子(NF-?B) | 第22-24页 |
| 2.2.8 统计学方法 | 第24页 |
| 2.3 实验结果 | 第24-33页 |
| 2.3.1 淫羊藿苷对hFOB1.19成骨细胞增殖的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2 淫羊藿苷对hFOB1.19成骨细胞中ALP活性的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.3 不同浓度ICA对成骨细胞CollagenI mRNA表达的影响 | 第26-28页 |
| 2.3.4 不同浓度的ICA对成骨细胞中BGP的mRNA表达的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.5 不同浓度的ICA对成骨细胞钙结节形成的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.6 ICA对成骨细胞细胞表达的TGF-β1、NF-?B的影响 | 第30-33页 |
| 2.4 小结 | 第33-36页 |
| 第3章 淫羊藿苷对hFOB1.19人成骨细胞OPG/RANKL信号通路的影响 | 第36-52页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第36-38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 3.2.1 主要溶液配制 | 第38-39页 |
| 3.2.2 q RT-PCR检测OPG、RANKL的mRNA表达 | 第39-41页 |
| 3.2.3 Western blot检测OPG、RANKL蛋白的表达 | 第41-42页 |
| 3.2.4 统计学方法 | 第42页 |
| 3.3 实验结果 | 第42-50页 |
| 3.3.1 淫羊藿苷对成骨细胞OPG﹑RANKL的mRNA和蛋白表达的影响 | 第42-46页 |
| 3.3.2 雌激素受体介导淫羊藿苷影响成骨细胞的OPG、RANKLmRNA和蛋白的表达 | 第46-50页 |
| 3.4 小结 | 第50-52页 |
| 第4章 讨论 | 第52-58页 |
| 第5章 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 文献综述 | 第66-73页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
