| 摘要 | 第6-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-26页 |
| 1.1 器官形态发生 | 第14-15页 |
| 1.1.1 概述 | 第14-15页 |
| 1.1.2 器官形态发生研究进展 | 第15页 |
| 1.2 生物电编码器官形态发生 | 第15-17页 |
| 1.3 生物电技术方面的研究进展 | 第17页 |
| 1.4 器官形态发生研究的模型 | 第17-24页 |
| 1.4.1 鹿茸形态发生来源组织单一，且具有胚胎组织特性 | 第17-20页 |
| 1.4.2 鹿茸形态发生可以通过AP进行人工调整 | 第20-22页 |
| 1.4.3 鹿茸形态发生具有种属特异性 | 第22-23页 |
| 1.4.4 鹿茸形态发生受激素调控 | 第23页 |
| 1.4.5 鹿茸是自然界唯一能够完全再生的哺乳动物器官 | 第23-24页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第24-26页 |
| 第二章 梅花鹿鹿茸形态发生蓝图信息的确定 | 第26-51页 |
| 2.1 材料和方法 | 第26-34页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 2.1.2 试验器材 | 第26-27页 |
| 2.1.3 实验器材处理和实验试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.4 实验一：AP左右极性颠倒后的鹿茸形态发生 | 第28-29页 |
| 2.1.5 实验二：AP液氮冷冻后的鹿茸形态发生 | 第29-30页 |
| 2.1.6 实验三：AP叠加后的鹿茸形态发生 | 第30-31页 |
| 2.1.7 实验四：AP异位移植的再生茸形态 | 第31-32页 |
| 2.1.8 实验五：AP离体培养后的活体移植 | 第32-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-47页 |
| 2.2.1 实验一：AP左右极性颠倒后的鹿茸形态发生 | 第34-36页 |
| 2.2.2 实验二：AP液氮冷冻后的鹿茸形态发生 | 第36-39页 |
| 2.2.3 实验三：AP叠加后的鹿茸形态发生 | 第39-40页 |
| 2.2.4 实验四：AP异位移植再生茸形态分析 | 第40-44页 |
| 2.2.5 实验五：AP离体培养后活体移植 | 第44-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-50页 |
| 2.4 小结 | 第50-51页 |
| 第三章 AP干细胞钠离子浓度测定 | 第51-63页 |
| 3.1 材料和方法 | 第51-57页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第51页 |
| 3.1.2 试验器材 | 第51-52页 |
| 3.1.3 实验器材处理和实验试剂 | 第52-53页 |
| 3.1.4 AP、PP、FP、PPP、DPP组织取样及细胞离体培养 | 第53-57页 |
| 3.2 结果与分析 | 第57-61页 |
| 3.2.1 骨膜组织取材 | 第57-58页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第58页 |
| 3.2.3 细胞生长曲线 | 第58-59页 |
| 3.2.4 AP、PP、FP细胞内钠离子染色 | 第59页 |
| 3.2.5 莫能菌素对细胞内钠离子浓度的影响 | 第59-60页 |
| 3.2.6 MS-222对细胞内钠离子浓度的影响 | 第60-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-62页 |
| 3.4 小结 | 第62-63页 |
| 第四章 AP和PP干细胞膜钠离通道基因筛选 | 第63-77页 |
| 4.1 材料和方法 | 第64-70页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第64页 |
| 4.1.2 试验器材 | 第64页 |
| 4.1.3 实验试剂和实验器材 | 第64-66页 |
| 4.1.4 AP、PPP、DPP、FP细胞RNA提取 | 第66-67页 |
| 4.1.5 基因扩增 | 第67-70页 |
| 4.2 结果与分析 | 第70-75页 |
| 4.2.1 RNA提取结果 | 第70-71页 |
| 4.2.2 PCR检测结果 | 第71-75页 |
| 4.2.3 测序结果 | 第75页 |
| 4.3 讨论 | 第75-76页 |
| 4.4 小结 | 第76-77页 |
| 第五章 性激素对二茬茸及细胞内钠离子浓度的影响 | 第77-88页 |
| 5.1 材料和方法 | 第77-81页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第77页 |
| 5.1.2 试验器材 | 第77-78页 |
| 5.1.3 实验器材处理和实验试剂 | 第78-79页 |
| 5.1.4 实验一：抗雄性激素对梅花鹿二茬茸发育的影响 | 第79-80页 |
| 5.1.5 实验二：睾酮对AP、PP、FP细胞内钠离子浓度的影响 | 第80-81页 |
| 5.2 结果 | 第81-86页 |
| 5.2.1 实验一：抗雄性激素对梅花鹿二茬茸发育的影响 | 第81-85页 |
| 5.2.2 实验二：睾酮对AP、PP、FP细胞内钠离子浓度的影响 | 第85-86页 |
| 5.3 讨论 | 第86-87页 |
| 5.4 小结 | 第87-88页 |
| 第六章 AP生物电极化状态干扰 | 第88-95页 |
| 6.1 材料和方法 | 第88-92页 |
| 6.1.1 实验动物 | 第88页 |
| 6.1.2 试验器材 | 第88-89页 |
| 6.1.3 实验器材处理和实验试剂 | 第89-90页 |
| 6.1.4 AP取样及离体培养 | 第90-92页 |
| 6.1.5 AP原位活体移植 | 第92页 |
| 6.2 结果与分析 | 第92-93页 |
| 6.3 讨论 | 第93-94页 |
| 6.4 小结 | 第94-95页 |
| 第七章 结论 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-102页 |
| 附录 | 第102-111页 |
| 附录 1 哺乳动物电压门控性钠离子通道类型及其组织分布 | 第102-103页 |
| 附录 2 NaV基因PCR引物设计（1） | 第103-105页 |
| 附录 3 NaV基因PCR引物设计（2） | 第105-107页 |
| 附录 4 序列测定结果 | 第107-110页 |
| 附录 5 抗雄性激素试验血浆睾酮含量测定结果 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 作者简历 | 第112-113页 |
