| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-29页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 荧光探针的基本结构 | 第11-12页 |
| 1.2.1 荧光团 | 第11-12页 |
| 1.2.2 识别基团 | 第12页 |
| 1.2.3 连接臂 | 第12页 |
| 1.3 荧光探针的识别原理 | 第12-13页 |
| 1.3.1 光诱导电子转移(PET) | 第12-13页 |
| 1.3.2 分子内电荷转移(ICT) | 第13页 |
| 1.3.3 荧光共振能量转移(FRET) | 第13页 |
| 1.3.4 C=N异构化(C=Nisomerization) | 第13页 |
| 1.3.5 激发态分子内质子转移(ESIPT) | 第13页 |
| 1.4 HSO_3~-探针研究进展 | 第13-17页 |
| 1.4.1 基于醛基加成反应的HSO_3~-探针 | 第13-14页 |
| 1.4.2 基于羟基保护的HSO_3~-探针 | 第14-15页 |
| 1.4.3 基于不饱和双键反应的HSO_3~-探针 | 第15-16页 |
| 1.4.4 基于开/成环反应的HSO_3~-探针 | 第16-17页 |
| 1.5 H_2S探针研究进展 | 第17-21页 |
| 1.5.1 基于叠氮(或硝基)还原反应的H_2S探针 | 第17-19页 |
| 1.5.2 基于羟基保护的H_2S探针 | 第19页 |
| 1.5.3 基于亲核加成的H_2S探针 | 第19-20页 |
| 1.5.4 基于迈克尔加成的H_2S探针 | 第20页 |
| 1.5.5 基于二硫（硒）化物交换的H_2S探针 | 第20-21页 |
| 1.5.6 基于硫化铜沉淀法的H_2S探针 | 第21页 |
| 1.6 本文研究内容 | 第21-22页 |
| 参考文献 | 第22-29页 |
| 第二章 基于苯并噻唑荧光团的HSO_3~-探针的合成及性质研究 | 第29-47页 |
| 2.1 引言 | 第29-30页 |
| 2.2 实验部分 | 第30-34页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.3 探针HBT-N1和HBT-N2的合成与表征 | 第31-33页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第33-34页 |
| 2.2.5 荧光量子产率的测定 | 第34页 |
| 2.2.6 细胞毒性实验 | 第34页 |
| 2.2.7 细胞成像实验 | 第34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.3.1 光谱特性 | 第34-35页 |
| 2.3.2 探针对HSO_3~-的光学响应 | 第35-37页 |
| 2.3.3 反应动力学 | 第37页 |
| 2.3.4 体系pH的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.5 探针的选择性与干扰性研究 | 第38-40页 |
| 2.3.6 机理验证 | 第40-41页 |
| 2.3.7 生物应用 | 第41-43页 |
| 2.4 结论 | 第43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 第三章 新型苯并吡喃鎓类HSO_3~-探针的合成及性质研究 | 第47-61页 |
| 3.1 引言 | 第47-48页 |
| 3.2 实验部分 | 第48-52页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第48页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第48页 |
| 3.2.3 探针QPCT的合成与表征 | 第48-50页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第50-51页 |
| 3.2.5 荧光量子产率的测定 | 第51页 |
| 3.2.6 细胞毒性实验 | 第51页 |
| 3.2.7 细胞成像实验 | 第51-52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-57页 |
| 3.3.1 探针对HSO_3~-的光学响应 | 第52-53页 |
| 3.3.2 反应动力学 | 第53-54页 |
| 3.3.3 体系pH的影响 | 第54页 |
| 3.3.4 探针的选择性与干扰性研究 | 第54-55页 |
| 3.3.5 机理验证 | 第55-56页 |
| 3.3.6 探针QPCT在实际样品中的应用 | 第56页 |
| 3.3.7 生物应用 | 第56-57页 |
| 3.4 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-61页 |
| 第四章 基于苯并噻唑荧光团的H_2S探针的合成及性质研究 | 第61-77页 |
| 4.1 引言 | 第61-62页 |
| 4.2 实验部分 | 第62-65页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第62页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第62页 |
| 4.2.3 探针HBT-C的合成与表征 | 第62-63页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第63-64页 |
| 4.2.5 荧光量子产率的测定 | 第64页 |
| 4.2.6 细胞毒性实验 | 第64页 |
| 4.2.7 细胞成像实验 | 第64-65页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第65-73页 |
| 4.3.1 探针HBT-C对Cu~(2+)的光学响应 | 第65-66页 |
| 4.3.2 探针HBT-C对Cu~(2+)响应的动力学研究 | 第66-67页 |
| 4.3.3 pH对探针HBT-C检测Cu~(2+)效果的影响 | 第67页 |
| 4.3.4 探针HBT-C对Cu~(2+)选择性研究 | 第67-68页 |
| 4.3.5 探针HBT-C与Cu~(2+)的络合比 | 第68-69页 |
| 4.3.6 HBT-C-Cu络合物对H_2S的光学响应 | 第69-70页 |
| 4.3.7 HBT-C-Cu络合物对H_2S响应的动力学研究 | 第70页 |
| 4.3.8 pH对HBT-C-Cu络合物检测H_2S效果的影响 | 第70-71页 |
| 4.3.9 HBT-C-Cu络合物对H_2S选择性研究 | 第71-72页 |
| 4.3.10 检测机理推测 | 第72页 |
| 4.3.11 生物应用 | 第72-73页 |
| 4.4 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 全文总结 | 第77-78页 |
| 附图 | 第78-92页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
