| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1.1 自噬的发现和发展历程 | 第10页 |
| 1.2 自噬的生物学意义 | 第10页 |
| 1.3 自噬的分类和生物学过程 | 第10页 |
| 1.4 植物自噬的分子调控机制 | 第10-13页 |
| 1.4.1 类泛素化耦联系统 | 第10-12页 |
| 1.4.2 ATG9膜脂循环系统 | 第12页 |
| 1.4.3 PtdIns3K复合体 | 第12-13页 |
| 1.4.4 Vti12 SNARE复合体 | 第13页 |
| 1.5 植物细胞自噬的生理功能 | 第13-15页 |
| 1.5.1 自噬参与植物响应非生物胁迫 | 第13页 |
| 1.5.2 自噬参与植物生长发育 | 第13-14页 |
| 1.5.3 自噬参与植物细胞程序性死亡 | 第14页 |
| 1.5.4 自噬参与植物抵御病原体侵染 | 第14-15页 |
| 1.6 植物自噬的调控 | 第15-17页 |
| 1.7 自噬的研究方法 | 第17-19页 |
| 1.7.1 显微镜观察法 | 第17-19页 |
| 1.7.2 免疫印迹检测 | 第19页 |
| 1.8 研究目的及意义 | 第19页 |
| 1.9 研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 ATG8e多克隆抗体的制备 | 第21-37页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-32页 |
| 2.2.1 材料 | 第21-28页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-35页 |
| 2.3.1 鉴定pGEX-4T1ATG8e原核表达载体 | 第32-33页 |
| 2.3.2 重组蛋白的诱导表达和纯化 | 第33-34页 |
| 2.3.3 ATG8e多克隆抗体的有效性检测和其制备 | 第34页 |
| 2.3.4 ATG8e多克隆抗体对拟南芥内源ATG8e蛋白的特异性检测 | 第34-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 PBA1多克隆抗体的制备 | 第37-43页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 3.2.1 材料 | 第37-38页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-42页 |
| 3.3.1 鉴定pET28a-PBA1原核表达载体 | 第40页 |
| 3.3.2 重组蛋白的诱导表达和纯化 | 第40-41页 |
| 3.3.3 His-PBA1多克隆抗体的有效性检测和制备 | 第41-42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-43页 |
| 第四章 ATG8e和ATG8e-PE条带的鉴定 | 第43-57页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 材料与方法 | 第43-50页 |
| 4.2.1 材料 | 第43-47页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第47-50页 |
| 4.3 实验结果 | 第50-56页 |
| 4.3.1 野生型拟南芥植株碳饥饿5天实验结果 | 第50-51页 |
| 4.3.2 野生型拟南芥植株碳饥饿time-course实验结果 | 第51-52页 |
| 4.3.3 Conanamycin A处理野生型拟南芥植株 | 第52-53页 |
| 4.3.4 BTH处理野生型拟南芥植株 | 第53-54页 |
| 4.3.5 E-64d处理野生型拟南芥植株 | 第54页 |
| 4.3.6 在ATG8e过表达T3代植物中检测ATG8e和ATG8e-PE的表达 | 第54页 |
| 4.3.7 磷脂酶处理野生型拟南芥植株 | 第54-55页 |
| 4.3.8 突变体atg5-1 和atg7-3 植物中检测ATG8e和ATG8e-PE的表达 | 第55-56页 |
| 4.4 讨论 | 第56-57页 |
| 第五章 总结和展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 缩略词 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 作者简介 | 第67页 |
