| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-15页 |
| 前言 | 第15-20页 |
| 研究现状、成果 | 第15-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-20页 |
| 一、胎鼠脑皮层神经干细胞的原代培养及冻存复苏 | 第20-34页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-29页 |
| 1.1.1 实验材料与器械 | 第20-23页 |
| 1.1.2 胎鼠脑皮层神经干细胞的分离、培养与纯化 | 第23-25页 |
| 1.1.3 胎鼠脑皮层神经干细胞的冻存与复苏 | 第25-26页 |
| 1.1.4 胎鼠脑皮层神经干细胞的分化培养 | 第26-27页 |
| 1.1.5 胎鼠脑皮层神经干细胞及其分化细胞的鉴定 | 第27-29页 |
| 1.1.6 统计学方法 | 第29页 |
| 1.2 结果 | 第29-31页 |
| 1.2.1 胎鼠脑皮层神经干细胞体外培养形态学观察 | 第29-30页 |
| 1.2.2 胎鼠脑皮层神经干细胞及其分化能力的鉴定结果 | 第30页 |
| 1.2.3 冻存与复苏后神经干细胞形态学观察及分化能力鉴定 | 第30-31页 |
| 1.3 讨论 | 第31-33页 |
| 1.3.1 神经干细胞的特性与功能 | 第31-32页 |
| 1.3.2 脊髓损伤微环境中神经干细胞特性的改变 | 第32-33页 |
| 1.4 小结 | 第33-34页 |
| 二、血管生成素2对神经干细胞诱导分化作用的研究 | 第34-50页 |
| 2.1 对象和方法 | 第34-45页 |
| 2.1.1 实验材料与器械 | 第34-37页 |
| 2.1.2 血管生成素2的配制与使用 | 第37页 |
| 2.1.3 多聚赖氨酸包被 | 第37页 |
| 2.1.4 血管生成素2对神经干细胞的诱导分化 | 第37-38页 |
| 2.1.5 逆转录聚合酶链式反应（RT-PCR) | 第38-40页 |
| 2.1.6 免疫细胞化学染色 | 第40-41页 |
| 2.1.7 免疫印迹试验（Western blot） | 第41-44页 |
| 2.1.8 统计学方法 | 第44-45页 |
| 2.2 结果 | 第45-47页 |
| 2.2.1 逆转录聚合酶链式反应（RT-PCR）检测结果 | 第45页 |
| 2.2.2 免疫细胞化学染色结果 | 第45-46页 |
| 2.2.3 免疫印迹试验（Western blot）结果 | 第46-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-49页 |
| 2.3.1 Tie2受体在神经干细胞分化过程中的表达 | 第47页 |
| 2.3.2 血管生成素2对神经干细胞诱导分化的作用 | 第47-49页 |
| 2.4 小结 | 第49-50页 |
| 三、血管生成素2对神经干细胞诱导分化作用机制的研究 | 第50-68页 |
| 3.1 对象和方法 | 第50-59页 |
| 3.1.1 实验材料与器械 | 第50-53页 |
| 3.1.2 LY294002与Rapamycin的配制与使用 | 第53页 |
| 3.1.3 免疫细胞化学染色 | 第53-54页 |
| 3.1.4 免疫印迹试验（Western blot） | 第54-57页 |
| 3.1.5 流式细胞术（Flow cytometry） | 第57-59页 |
| 3.1.6 统计学方法 | 第59页 |
| 3.2 结果 | 第59-64页 |
| 3.2.1 免疫印迹试验（Western blot）结果 | 第59-62页 |
| 3.2.2 免疫细胞化学染色结果 | 第62-63页 |
| 3.2.3 流式细胞术（Flow cytometry）凋亡检测结果 | 第63-64页 |
| 3.3 讨论 | 第64-67页 |
| 3.3.1 PI3K/AKT/mTOR信号通路在神经干细胞分化中的作用 | 第64-65页 |
| 3.3.2 血管生成素2诱导神经干细胞分化的潜在分子机制 | 第65-67页 |
| 3.4 小结 | 第67-68页 |
| 全文结论 | 第68-70页 |
| 论文创新点 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第79-81页 |
| 附录 | 第81-90页 |
| 综述 | 第90-108页 |
| 综述参考文献 | 第97-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
