| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 研究现状、成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、增殖期糖尿病视网膜病变患者增殖膜活性的确定及相应玻璃体液miRNA表达差异的筛选与分析 | 第18-29页 |
| 1.1 材料与方法 | 第18-22页 |
| 1.1.1 增殖膜增殖活性的鉴定 | 第18-19页 |
| 1.1.2 玻璃体液miRNA筛选 | 第19-22页 |
| 1.2 结果 | 第22-25页 |
| 1.2.1 增殖膜增殖活力的鉴定结果 | 第22-23页 |
| 1.2.2 玻璃体液miRNA qPCR芯片分析 | 第23-25页 |
| 1.3 讨论 | 第25-28页 |
| 1.3.1 增殖膜增殖活力的鉴定 | 第25-27页 |
| 1.3.2 玻璃体液microRNA | 第27-28页 |
| 1.4 小结 | 第28-29页 |
| 二、microRNA-451a在视网膜色素上皮细胞高糖刺激条件下的表达变化 | 第29-39页 |
| 2.1 对象和方法 | 第29-35页 |
| 2.1.1 主要试剂,材料 | 第29-30页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第30-35页 |
| 2.1.3 统计学处理 | 第35页 |
| 2.2 结果 | 第35-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 三、microRNA-451a在人视网膜色素上皮细胞系中功能研究 | 第39-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第39-42页 |
| 3.1.1 材料 | 第39-40页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.2 结果 | 第42-47页 |
| 3.2.1 转染效率 | 第42-43页 |
| 3.2.2 MTT检测细胞增殖力 | 第43-44页 |
| 3.2.3 CCK检测细胞增殖力 | 第44-45页 |
| 3.2.4 划痕实验检测细胞迁移能力 | 第45-47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-49页 |
| 3.3.1 MTT和CCK8检测细胞增殖的研究 | 第47-48页 |
| 3.3.2 划痕实验检测细胞迁移的研究 | 第48-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 四、miRNA-451a的靶基因及下游基因的确认 | 第50-73页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第50-65页 |
| 4.1.1 miR-451a靶基因预测分析 | 第50页 |
| 4.1.2 luciferace双荧光素酶报告分析系统 | 第50-58页 |
| 4.1.3 质粒提取 | 第58页 |
| 4.1.4 Promega-Luciferase Assay操作 | 第58-59页 |
| 4.1.5 PCR法验证miR-451a下游信号 | 第59-61页 |
| 4.1.6 Westernblot | 第61-65页 |
| 4.2 实验结果 | 第65-70页 |
| 4.2.1 载体构建 | 第65页 |
| 4.2.2 双荧光素酶报告基因 | 第65-66页 |
| 4.2.3 ATF-2实时荧光定量PCR及western Blot结果 | 第66-68页 |
| 4.2.4 相关下游蛋白的PCR结果分析 | 第68-70页 |
| 4.3 讨论 | 第70-72页 |
| 4.4 小结 | 第72-73页 |
| 全文结论 | 第73-74页 |
| 论文创新点 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-82页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第82-83页 |
| 附录 | 第83-87页 |
| 综述 玻璃体切除术后细菌性眼内炎临床特点及应对策略 | 第87-94页 |
| 综述参考文献 | 第91-94页 |
| 哺乳动物视网膜中miRNA表达及相关功能 | 第94-103页 |
| 综述参考文献 | 第100-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
