| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第1章 引言 | 第8-18页 |
| 1.1 细胞表面微囊泡的由来 | 第8页 |
| 1.2 微颗粒 | 第8-13页 |
| 1.2.1 微颗粒的特性 | 第9页 |
| 1.2.2 微颗粒的形成 | 第9-10页 |
| 1.2.3 外界刺激与微颗粒的形成 | 第10-11页 |
| 1.2.4 微颗粒研究的状况 | 第11-12页 |
| 1.2.5 微颗粒的研究方法 | 第12-13页 |
| 1.2.6 微颗粒与疾病的关系 | 第13页 |
| 1.3 微颗粒与细胞表面微囊泡的纠缠 | 第13-14页 |
| 1.4 多泡小体与细胞表面微囊泡 | 第14-15页 |
| 1.4.1 多泡小体 | 第14-15页 |
| 1.4.2 多泡小体与细胞表面微囊泡的纠缠 | 第15页 |
| 1.5 凋亡小体与细胞表面微囊泡的纠缠 | 第15-16页 |
| 1.6 线粒体与细胞表面微囊泡的纠缠 | 第16-17页 |
| 1.7 小结 | 第17-18页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第18-25页 |
| 2.1 细胞 | 第18页 |
| 2.2 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.3 主要试剂 | 第19页 |
| 2.4 试剂及其配制方法 | 第19-20页 |
| 2.5 实验方法 | 第20-25页 |
| 2.5.1 细胞的传代培养以及冻存复苏 | 第20-21页 |
| 2.5.2 氯仿甲醇处理对HUVEC和HepG-2 细胞表面微囊泡的影响 | 第21页 |
| 2.5.3 Triton X-100处理HUVEC和HepG-2 后氯仿甲醇溶解微囊泡 | 第21页 |
| 2.5.4 乙醇梯度脱水观察细胞表面微囊泡 | 第21页 |
| 2.5.5 细胞固定后水环境中空气干燥对微囊泡的影响 | 第21页 |
| 2.5.6 动态观察各种去污剂处理HUVEC和HepG-2 | 第21页 |
| 2.5.7 线粒体活染及其动态观察 | 第21-22页 |
| 2.5.8 TNF-α 及LPS刺激HUVEC后PS染色 | 第22页 |
| 2.5.9 TNF-α 刺激对细胞表面微囊泡数目变化的影响 | 第22页 |
| 2.5.10 SBYR green I染色 | 第22页 |
| 2.5.11 CD63、CD107α 和caveolin-1 免疫荧光染色 | 第22-23页 |
| 2.5.12 GM1及HepG-2 GM3免疫染色 | 第23页 |
| 2.5.13 EMP标志物CD31和CD146免疫荧光染色 | 第23页 |
| 2.5.14 FAK染色 | 第23页 |
| 2.5.15 扫描电镜观察细胞表面微囊泡 | 第23-24页 |
| 2.5.16 HUVEC细胞表面微囊泡的分离 | 第24页 |
| 2.5.17 透射电子显微镜观察细胞表面微囊泡 | 第24-25页 |
| 第3章 实验结果 | 第25-47页 |
| 3.1 水环境中空气干燥微囊泡会对应形成外面呈圆形的向内凹陷 | 第25-26页 |
| 3.2 微囊泡对氯仿甲醇处理的敏感性 | 第26-28页 |
| 3.3 锇酸未固定时乙醇梯度脱水引起的细胞表面微囊泡的转变 | 第28-29页 |
| 3.4 锇酸固定可以较好地保留细胞表面微囊泡 | 第29-30页 |
| 3.5 线粒体与微囊泡的非对应性 | 第30-32页 |
| 3.6 多泡小体和溶酶体与细胞表面微囊泡的非对应性 | 第32-34页 |
| 3.7 细胞表面微囊泡与凋亡小体的非对应性 | 第34-35页 |
| 3.8 FAK与细胞表面微囊泡的共定位研究 | 第35-36页 |
| 3.9 小窝蛋白-1 并非细胞表面微囊泡所特有 | 第36-37页 |
| 3.10 脂筏与细胞表面微囊泡的关系 | 第37-38页 |
| 3.11 TNF-α 刺激对细胞表面微囊泡数目的影响 | 第38-39页 |
| 3.12 PS外化与细胞表面微囊泡关系 | 第39-40页 |
| 3.13 EMP的标志物CD31和CD146不存在于细胞表面微囊泡上 | 第40-42页 |
| 3.14 细胞表面微囊泡对不同去垢剂及其浓度的耐受性 | 第42-46页 |
| 3.15 扫描电镜观察细胞表面微囊泡 | 第46页 |
| 3.16 细胞表面微囊泡的分离及透射电镜观察 | 第46-47页 |
| 第4章 讨论 | 第47-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 附表 | 第56页 |
