| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 实验研究 | 第13-44页 |
| ·材料与方法 | 第13-17页 |
| ·实验动物 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13-14页 |
| ·主要设备及仪器 | 第14-15页 |
| ·实验所需溶液及其配制 | 第15-17页 |
| ·实验方法 | 第17-22页 |
| ·实验动物分组及给药方法 | 第17页 |
| ·大鼠 Marmarou’s 中度弥漫性脑创伤模型制备 | 第17-18页 |
| ·脑组织内含水量的测量 | 第18页 |
| ·空间学习记忆功能测试 | 第18页 |
| ·组织学标本的制备及相应染色方法 | 第18-22页 |
| ·Western blot 平均光密度（OD）测定及结果判定 | 第22页 |
| ·统计学处理 | 第22页 |
| ·结果 | 第22-33页 |
| ·弥漫性脑创伤模型的制备评价 | 第22-23页 |
| ·HE 染色结果 | 第23页 |
| ·大鼠的空间学习记忆功能检测结果 | 第23-26页 |
| ·脑组织水含量测定 | 第26-27页 |
| ·P2X7 的 Western blot 检测结果 | 第27-29页 |
| ·IL-1β与 TNF-α的 Western blot 检测结果 | 第29-31页 |
| ·PKCγ western blot 检测结果 | 第31-33页 |
| ·PKCγ与 NeuN 的激光共聚焦检测结果 | 第33页 |
| ·讨论 | 第33-38页 |
| ·大鼠 Marmarou 中度弥漫性脑创伤模型制作及效果评价 | 第33-34页 |
| ·小胶质细胞在炎性反应中的作用 | 第34-35页 |
| ·TBI 启动了 P2X7 介导的小胶质细胞的激活加重了创伤后的继发性损伤 | 第35-36页 |
| ·BBG 通过抑制 P2X7R 的激活发挥神经保护作用 | 第36-37页 |
| ·弥漫性脑创伤后给予 BBG 干预后下调 PKCγ改善了大鼠的神经功能障碍 | 第37-38页 |
| ·结论 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 第2章 综述 小胶质细胞在中枢神经系统中作用 | 第44-56页 |
| ·小胶质细胞在炎性反应中的作用 | 第44-47页 |
| ·促炎性因子 | 第45页 |
| ·氧自由基（ROS） | 第45-46页 |
| ·环氧化酶 2（COX-2） | 第46页 |
| ·抗炎性细胞的介质 | 第46-47页 |
| ·小胶质细胞在神经变性型疾病中所起到的作用 | 第47-49页 |
| ·小胶质细胞与阿尔茨海默病 | 第47页 |
| ·小胶质细胞与帕金森病 | 第47-48页 |
| ·小胶质细胞与亨廷顿病 | 第48页 |
| ·小胶质细胞与多发性硬化病 | 第48页 |
| ·小胶质细胞与萎缩性肌肉侧索硬化症 | 第48-49页 |
| ·小胶质细胞与嘌呤受体 | 第49-51页 |
| ·P2Y 受体 | 第49页 |
| ·P2X 受体 | 第49-51页 |
| ·小胶质细胞与嘌呤受体 | 第51页 |
| ·小结与展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 导师简介 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59-60页 |
| 学位论文数据集 | 第60页 |
