| 中文摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 材料与方法 | 第15-24页 |
| 1. 材料 | 第15-16页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·主要药物与试剂 | 第15-16页 |
| 2. 主要仪器和设备 | 第16页 |
| 3. 方法 | 第16-24页 |
| ·实验分组及脑I/R损伤大鼠模型制备 | 第16-17页 |
| ·神经行为学评估 | 第17页 |
| ·TTC染色法测定大鼠脑梗死体积 | 第17-18页 |
| ·TUNEL染色法测定大鼠脑组织细胞凋亡 | 第18页 |
| ·Western blotting法检测大鼠脑组织中Cx36、Pannexin-1、PKC、Bax、Bcl-2蛋白表达 | 第18-19页 |
| ·大鼠脑组织中ROS、MDA、SOD、GSH的含量测定 | 第19页 |
| ·神经元细胞的原代培养及鉴定 | 第19-20页 |
| ·实验分组及神经元细胞缺氧/复氧模型制备 | 第20-21页 |
| ·MTT法检测神经元细胞存活率 | 第21页 |
| ·细胞接种荧光示踪法检测神经元GJ功能 | 第21-22页 |
| ·Hochest 33258染色法检测神经元细胞凋亡 | 第22-23页 |
| ·Western blotting法检测神经元细胞Cx36、Pannexin-1、PKC、Bax、Bcl-2蛋白表达 | 第23页 |
| ·统计学处理方法 | 第23-24页 |
| 实验结果 | 第24-38页 |
| 1. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对脑I/R损伤大鼠神经功能的影响 | 第24页 |
| 2. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对脑I/R损伤大鼠脑梗死体积影响 | 第24-25页 |
| 3. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对脑I/R损伤大鼠脑组织中Cx36、Pannexin-1、PKC蛋白表达的影响 | 第25-27页 |
| 4. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对脑I/R损伤大鼠脑组织细胞凋亡的影响 | 第27-28页 |
| 5. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对脑I/R损伤大鼠脑组织中Bax、Bcl-2 蛋白表达的影响 | 第28-29页 |
| 6. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对脑I/R损伤大鼠脑组织中ROS、MDA、GSH、SOD含量的影响 | 第29-30页 |
| 7. 神经元细胞形态学观察 | 第30-31页 |
| 8. MAP-2 鉴定神经元细胞 | 第31-32页 |
| 9. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对H/R损伤神经元细胞存活率的影响 | 第32页 |
| 10. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对H/R损伤神经元细胞GJ功能的影响 | 第32-34页 |
| 11. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对H/R损伤神经元细胞中Cx36、Pannexin-1、PKC蛋白表达的影响 | 第34-35页 |
| 12. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对H/R损伤神经元细胞凋亡的影响 | 第35-36页 |
| 13. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对H/R损伤神经元细胞中Bax、Bcl-2 蛋白表达的影响 | 第36-38页 |
| 讨论 | 第38-44页 |
| 1. NADPH氧化酶抑制剂apocynin减轻脑I/R损伤及神经元H/R损伤 | 第38-39页 |
| ·NADPH氧化酶抑制剂apocynin减轻脑I/R损伤 | 第38-39页 |
| ·NADPH氧化酶抑制剂apocynin减轻神经元H/R损伤 | 第39页 |
| 2. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对Cx36及Pannexin-1 蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| 3. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对神经元GJ功能的影响 | 第40-41页 |
| 4. PKC激酶对缝隙连接蛋白的调控 | 第41页 |
| 5. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对凋亡的影响及可能机制 | 第41-42页 |
| 6. NADPH氧化酶抑制剂apocynin对大鼠脑组织中ROS、MDA、SOD、GSH的影响 | 第42-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 课题创新点 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 附录A 主要英文缩略词表 | 第53-54页 |
| 附录B 主要试剂配制方法 | 第54-57页 |
| 附录C 个人简历及发表文章情况 | 第57-58页 |
| 附录D 缝隙连接与脑缺血再灌注损伤的关系 | 第58-70页 |
| 参考文献 | 第67-70页 |
