| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1 引言 | 第12-23页 |
| ·研究的目的及意义 | 第12页 |
| ·农作物秸秆及化学组成 | 第12-15页 |
| ·半纤维素 | 第13页 |
| ·纤维素 | 第13-14页 |
| ·木质素 | 第14-15页 |
| ·微生物复合菌系协同降解木质纤维素的研究现状 | 第15-19页 |
| ·分解木质纤维素的微生物 | 第15-16页 |
| ·国内研究现状 | 第16-18页 |
| ·国外研究现状 | 第18-19页 |
| ·DGGE 技术在木质纤维素降解菌中的应用 | 第19-21页 |
| ·DGGE 技术的原理及发展历程 | 第19页 |
| ·DGGE 技术在木质纤维素生物降解研究中的应用 | 第19-21页 |
| ·研究内容及方案 | 第21-23页 |
| ·研究内容 | 第21-22页 |
| ·研究方案 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-33页 |
| ·菌种富集与驯化 | 第23页 |
| ·菌种来源 | 第23页 |
| ·培养条件 | 第23页 |
| ·测定指标与方法 | 第23-31页 |
| ·光学显微镜观察 | 第23页 |
| ·扫描电子显微镜观察 | 第23-24页 |
| ·细胞浓度 | 第24页 |
| ·pH 值的测定 | 第24页 |
| ·稻草失重 | 第24页 |
| ·纤维素、半纤维素、木质素含量的测定 | 第24-26页 |
| ·挥发性脂肪酸的测定 | 第26-27页 |
| ·氨态氮的测定 | 第27页 |
| ·DNA 的提取 | 第27-28页 |
| ·PCR 扩增 | 第28页 |
| ·DGGE 电泳 | 第28-29页 |
| ·DGGE 图谱目的条带的克隆测序 | 第29-30页 |
| ·序列分析 | 第30-31页 |
| ·试验主要仪器及药品试剂 | 第31-33页 |
| ·试验主要仪器 | 第31页 |
| ·试验药品试剂 | 第31-33页 |
| 3 筛选结果及发酵特性研究 | 第33-46页 |
| ·复合菌系LZF-12 的筛选构建 | 第33页 |
| ·复合菌系LZF-12 的形态观察 | 第33-35页 |
| ·复合菌系LZF-12 生长特性研究 | 第35-37页 |
| ·LZF-12 的生长曲线 | 第35-36页 |
| ·发酵液的DO 值变化 | 第36页 |
| ·不同初始pH 值对发酵体系内pH 变化的影响 | 第36-37页 |
| ·复合菌系LZF-12 的降解特性观察 | 第37-38页 |
| ·LZF-12 的滤纸降解特性 | 第37-38页 |
| ·LZF-12 的稻秆降解特性 | 第38页 |
| ·复合菌系LZF-12 的发酵特性研究 | 第38-45页 |
| ·不同培养条件对复合菌系降解效果的影响 | 第38-40页 |
| ·稻秆在复合菌系作用下的粗纤维变化 | 第40-41页 |
| ·培养基氮源的变化情况 | 第41-42页 |
| ·发酵过程中挥发酸变化 | 第42-43页 |
| ·碳源负荷对发酵过程的影响 | 第43-45页 |
| ·本章小结 | 第45-46页 |
| 4 稻秆预处理方式以及碳氮比对复合菌系降解稻秆的影响 | 第46-52页 |
| ·不同预处理方式对复合系降解性能的影响 | 第46-47页 |
| ·不同碳氮比下复合菌系的生长曲线 | 第47-48页 |
| ·不同碳氮比下发酵液pH 的变化 | 第48页 |
| ·不同碳氮比下稻秆失重变化 | 第48-49页 |
| ·不同碳氮比对挥发酸产量的影响 | 第49-51页 |
| ·本章小结 | 第51-52页 |
| 5 DGGE 电泳监测复合菌系 LZF-12 的群落结构 | 第52-57页 |
| ·样品基因组DNA 的提取 | 第52页 |
| ·发酵液样品 16SrRNA 的 PCR 扩增 | 第52-53页 |
| ·PCR 扩增产物的DGGE 电泳 | 第53-54页 |
| ·DGGE 图谱条带的序列比对 | 第54-56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 6 结论与建议 | 第57-59页 |
| ·主要结论 | 第57-58页 |
| ·存在的问题及建议 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第64页 |