黄连化学成分的分离及其降糖活性研究
摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-49页 |
·黄连概述 | 第13-14页 |
·黄连的主要药理作用 | 第14-20页 |
·抗病原微生物作用 | 第14-15页 |
·对消化系统的作用 | 第15页 |
·抗氧化作用 | 第15-16页 |
·抗癌作用 | 第16-17页 |
·抗炎作用 | 第17-18页 |
·降血糖作用 | 第18-19页 |
·改善心、脑血管疾病 | 第19-20页 |
·降压作用 | 第20页 |
·黄连的化学成分 | 第20-25页 |
·生物碱 | 第20-23页 |
·酸性成分 | 第23-24页 |
·其它 | 第24-25页 |
·黄连指纹图谱研究进展 | 第25-33页 |
·、色谱法 | 第25-30页 |
·光谱法 | 第30-32页 |
·DNA分子标记法 | 第32-33页 |
·黄连降糖作用研究进展 | 第33-36页 |
·黄连降糖有效成分研究 | 第33-34页 |
·黄连生物碱衍生物降糖活性研究 | 第34-35页 |
·黄连降糖机理研究 | 第35-36页 |
·本课题研究的总体思路 | 第36-38页 |
·研究背景和立题依据 | 第36-38页 |
·研究思路、方案 | 第38页 |
参考文献 | 第38-49页 |
第二章 黄连化学成分研究 | 第49-73页 |
·引言 | 第49-50页 |
·实验材料与仪器 | 第50-51页 |
·实验材料 | 第50页 |
·实验仪器 | 第50-51页 |
·实验方法 | 第51-54页 |
·黄连浸膏和生物碱的制备 | 第51页 |
·高速逆流色谱(HSCCC)分离 | 第51-52页 |
·非生物碱组分的制备 | 第52页 |
·柱层析色谱分离 | 第52-53页 |
·分离实验流程图 | 第53-54页 |
·HPLC分析 | 第54-55页 |
·样品溶液的制备 | 第54页 |
·HPLC条件 | 第54页 |
·测定方法 | 第54-55页 |
·结果与讨论 | 第55-66页 |
·黄连浸膏提取 | 第55页 |
·HSCCC分离 | 第55-61页 |
·柱层析分离结果 | 第61-64页 |
·结构鉴定 | 第64-66页 |
·HPLC分析结果 | 第66-71页 |
·系统适用性试验 | 第66页 |
·定性分析 | 第66-68页 |
·定量分析 | 第68-71页 |
·小结 | 第71页 |
参考文献 | 第71-73页 |
第三章 黄连降糖活性研究 | 第73-93页 |
·引言 | 第73-74页 |
·材料与试剂 | 第74-75页 |
·实验材料 | 第74页 |
·实验仪器 | 第74-75页 |
·实验方法 | 第75-78页 |
·HepG2细胞降糖实验 | 第75-76页 |
·MTT实验 | 第76页 |
·动物降糖实验 | 第76-78页 |
·结果与讨论 | 第78-90页 |
·各组分对HepG2细胞降糖活性 | 第78-80页 |
·各组分对HepG2细胞毒性效果 | 第80-82页 |
·组分对HepG2细胞协同降糖活性效果 | 第82-85页 |
·动物降糖实验 | 第85-90页 |
·小结 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-93页 |
第四章 黄连体外抗氧化活性评价 | 第93-107页 |
·引言 | 第93-94页 |
·材料与方法 | 第94-95页 |
·实验材料 | 第94页 |
·实验仪器 | 第94-95页 |
·实验方法 | 第95-98页 |
·超氧自由基O_2~-·的清除能力试验 | 第95页 |
·羟自由基·OH清除能力试验 | 第95页 |
·过氧化氢清除试验 | 第95-96页 |
·线粒体活性氧ROS的测定 | 第96-98页 |
·细胞ROS测定 | 第98页 |
·结果与讨论 | 第98-104页 |
·超氧自由基O_2~-·的清除能力结果 | 第98-99页 |
·清除羟自由基·OH能力结果 | 第99-101页 |
·过氧化氢清除结果 | 第101页 |
·线粒体内ROS清除定结果 | 第101-104页 |
·细胞内ROS清除实验结果 | 第104页 |
·小结 | 第104-105页 |
参考文献 | 第105-107页 |
结论与展望 | 第107-109页 |
博士期间发表的论文 | 第109-111页 |
参与的科研项目 | 第109-111页 |
致谢 | 第111-113页 |
附录 部分化合物图谱 | 第113-118页 |