| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩写词表 | 第9-12页 |
| 第一部分 文献综述 miRNAs 在骨骼肌损伤修复过程中的调控作用 | 第12-19页 |
| 1 miRNAs 的发现、生成及作用机制 | 第12-13页 |
| 2 miRNAs 的组织特异性表达及肌肉特异性 miRNAs（MyomiRs） | 第13页 |
| 3 miRNAs 在卫星细胞不同状态以及生肌分化过程中的作用 | 第13-15页 |
| ·miRNAs 在维持卫星细胞静息态中的调节作用 | 第13-14页 |
| ·miRNAs 在卫星细胞增殖过程中的调节作用 | 第14页 |
| ·miRNAs 在成肌细胞分化融合过程中的调节作用 | 第14-15页 |
| 4 miRNAs 在骨骼肌修复过程中的研究 | 第15-16页 |
| 5 miRNAs 在骨骼肌修复过程中的信号通路 | 第16页 |
| 6 结语 | 第16页 |
| 参考文献 | 第16-19页 |
| 第二部分 miR-1 和 miR-206 与下游基因 Cx43 和 HDAC4 在大鼠骨骼肌运动性损伤修复中表达变化的研究 | 第19-40页 |
| 前言 | 第19-20页 |
| 1 研究材料、对象与方法 | 第20-29页 |
| ·技术路线图 | 第20-21页 |
| ·主要试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器与设备 | 第22-24页 |
| ·实验对象、分组与运动方案 | 第24页 |
| ·实验对象 | 第24页 |
| ·实验分组 | 第24页 |
| ·运动方案 | 第24页 |
| ·动物取材 | 第24页 |
| ·肌组织 HE 染色 | 第24-25页 |
| ·RT-PCR 检测 miRNAs 及其靶基因 mRNA 表达 | 第25-27页 |
| ·Trizol RNA 抽提及质量检测方法 | 第25页 |
| ·cDNA 合成 | 第25-26页 |
| ·实时定量 PCR 反应的详细过程 | 第26-27页 |
| ·实时定量 PCR 使用引物的列表 | 第27页 |
| ·Western blot 法检测 miRNAs 下游靶基因蛋白表达 | 第27-29页 |
| ·western blot 所需试剂配置 | 第27-28页 |
| ·组织总蛋白的提取 | 第28页 |
| ·测定蛋白含量 | 第28页 |
| ·SDS-PAGE 电泳 | 第28页 |
| ·转膜 | 第28-29页 |
| ·免疫反应 | 第29页 |
| ·凝胶图像处理 | 第29页 |
| ·数据统计处理 | 第29页 |
| 2 结果 | 第29-33页 |
| ·腓肠肌 HE 染色 | 第29-30页 |
| ·大鼠骨骼肌运动性损伤修复过程中肌肉特异性 miRNAs 表达变化 | 第30-31页 |
| ·肌肉特异性 miRNAs 的下游靶基因的表达变化 | 第31-33页 |
| ·肌肉特异性 miRNAs 的下游靶基因 mRNA 水平的表达变化 | 第31-32页 |
| ·肌肉特异性 miRNAs 的下游靶基因蛋白水平的表达变化 | 第32-33页 |
| 3 分析讨论 | 第33-37页 |
| ·大鼠骨骼肌运动性损伤修复模型的建立 | 第33页 |
| ·参与肌肉运动性损伤修复的 miRNAs | 第33-35页 |
| ·肌肉特异性 miRNAs 在运动性损伤后肌肉再生过程中的作用 | 第35-37页 |
| ·miRNAs 靶基因 mRNA 与蛋白表达的变化趋势 | 第35-36页 |
| ·运动性损伤修复过程中两个特殊的时间点 | 第36-37页 |
| 4 结论 | 第37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 致谢 | 第40页 |
