| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 中英文缩略词 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 材料与方法 | 第12-20页 |
| 1 实验材料 | 第12-13页 |
| ·实验动物 | 第12页 |
| ·实验药品 | 第12页 |
| ·主要试剂 | 第12-13页 |
| ·主要仪器 | 第13页 |
| ·实验耗材 | 第13页 |
| 2 实验方法 | 第13-19页 |
| ·含药血清的制备 | 第13页 |
| ·CD105~+-BMSCs 的提取、培养及分离纯化 | 第13-15页 |
| ·体外构建大鼠心肌微环境 | 第15页 |
| ·MTT 法选取促进 CD105~+-BMSCs 分裂增殖的最佳药物浓度 | 第15-16页 |
| ·流式细胞仪检测 CFDA SE 荧光追踪 CD105~+-BMSCs 的分裂增殖情况 | 第16-18页 |
| ·免疫细胞化学法检测 CD105~+-BMSCs 表达 CTNT、GATA-4 的分化情况 | 第18-19页 |
| 3 统计学处理方法 | 第19-20页 |
| 结果 | 第20-32页 |
| 1 观察原代心肌细胞、 CD105~+-BMSCs 及其诱导分化后的形态学变化 | 第20-24页 |
| ·原代心肌细胞培养过程中的形态学观察 | 第20-21页 |
| ·原代 CD105~+-BMSCs 培养过程中的形态学观察 | 第21-22页 |
| ·心肌细胞条件培养基诱导 CD105~+-BMSCs3 天的形态学观察 | 第22-24页 |
| 2 选择各用药组的最佳倍比浓度 | 第24-25页 |
| ·根据 OD 值计算 24h 后 CD105~+-BMSCs 的增殖率 | 第24页 |
| ·MTT 法检测同一时间不同药物干预 CD105~+-BMSCs 增殖的曲线图 | 第24-25页 |
| 3 绘制 1 7 天各用药组 CD105~+-BMSCs 的生长曲线 | 第25页 |
| ·CD105~+-BMSCs 生长曲线的测定方法 | 第25页 |
| ·CD105~+-BMSCs 的生长曲线图 | 第25页 |
| 4 不同时间点各用药组 CD105~+-BMSCs 在第 3、5 代分裂增殖的差异 | 第25-26页 |
| 5 原代提取的心肌细胞阳性表达部分心肌特异性蛋白的鉴定结果 | 第26-29页 |
| ·心肌特异性肌钙蛋白 CTNT 的阳性表达 | 第26-27页 |
| ·心肌细胞转录因子 GATA-4 的阳性表达 | 第27-28页 |
| ·心肌成纤维细胞波形蛋白 Vimentin 的阳性表达 | 第28页 |
| ·心肌干细胞 CD117 的阳性表达 | 第28-29页 |
| 6 不同时间点各用药组 CD105~+-BMSCs 阳性表达 CTNT、GATA-4 的差异性 | 第29-32页 |
| ·细胞计数算取阳性细胞标记指数 | 第29页 |
| ·不同时间点 CD105~+-BMSCs 表达 CTNT 的分化情况 | 第29-30页 |
| ·不同时间点 CD105~+-BMSCs 表达 GATA-4 的分化情况 | 第30-32页 |
| 讨论 | 第32-37页 |
| 1 指标选择的分析 | 第32-33页 |
| 2 不同治则的中药诱导 BMSCs 向心肌样细胞定向分化的概述 | 第33页 |
| 3 心肌微环境诱导 BMSCs 向心肌样细胞定向分化的概述 | 第33-34页 |
| 4 实验检测结果的分析 | 第34-36页 |
| 5 活血化瘀治法的理论探讨 | 第36-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 附录 1 CFDA SE 荧光追踪 CD105~+-BMSCs 的流式图片 | 第42-47页 |
| 附录 2 CD105~+-BMSCs 阳性表达 CTNT 的免疫细胞化学图片 | 第47-51页 |
| 附录 3 CD105~+-BMSCs 阳性表达 GATA-4 的免疫细胞化学图片 | 第51-55页 |
| 附录 4 文献综述 | 第55-63页 |
| 参考文献 | 第60-63页 |
| 附录 5 在校期间论文论著和科研情况 | 第63页 |
