| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-12页 |
| 縮略词 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-22页 |
| ·胰岛素抵抗的病因 | 第13-14页 |
| ·肥胖与胰岛素抵抗的关系 | 第14-16页 |
| ·植物活性多糖调控脂质代谢 | 第16-20页 |
| ·南瓜多糖 | 第16-17页 |
| ·枸杞多糖 | 第17-18页 |
| ·黄芪多糖 | 第18页 |
| ·仙人掌多糖 | 第18-19页 |
| ·马齿苋多糖 | 第19-20页 |
| ·本课题的研究意义及研究内容 | 第20-22页 |
| ·本文的主要研究内容 | 第20-21页 |
| ·马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞增殖的影响 | 第20-21页 |
| ·马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞分化的影响 | 第21页 |
| ·马齿苋多糖改善3T3-L1脂肪细胞胰岛素抵抗的研究 | 第21页 |
| ·马齿苋多糖调控Ⅱ型糖尿病脂质代谢的研究 | 第21页 |
| ·研究意义 | 第21-22页 |
| 第2章 马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞增殖的影响 | 第22-32页 |
| ·实验材料 | 第22-23页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22-23页 |
| ·主要仪器 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-26页 |
| ·马齿苋多糖的提取 | 第23-24页 |
| ·粗提马齿苋多糖 | 第23-24页 |
| ·精制马齿苋多糖 | 第24页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞的培养 | 第24-25页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞的复苏 | 第24-25页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞的培养 | 第25页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞的传代 | 第25页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞的冻存 | 第25页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞的分化 | 第25页 |
| ·马齿苋精制多糖对3T3-L1前脂肪细胞增殖的作用 | 第25-26页 |
| ·MTT法检测3T3-L1前脂肪细胞增殖 | 第25-26页 |
| ·中性红染料摄取法检测3T3-L1前脂肪细胞增殖 | 第26页 |
| ·乳酸脱氢酶释放法检测3T3-L1前脂肪细胞增殖 | 第26页 |
| ·结果与分析 | 第26-29页 |
| ·马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞增殖的影响 | 第26-29页 |
| ·MTT比色法评价 | 第26-27页 |
| ·中性红法评价 | 第27-28页 |
| ·乳酸脱氢酶释放法评价 | 第28-29页 |
| ·结果讨论 | 第29-31页 |
| ·本章小结 | 第31-32页 |
| 第3章 马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞分化的影响 | 第32-47页 |
| ·实验材料 | 第33-37页 |
| ·实验材料 | 第33-34页 |
| ·主要试剂 | 第34-35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·试剂的配制 | 第35-37页 |
| ·实验方法 | 第37-41页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞分化的定量检测 | 第37-38页 |
| ·甘油含量的测定 | 第37-38页 |
| ·油红O染色定量分析 | 第38页 |
| ·马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞分化过程中相关转录因子的影响 | 第38-41页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第38-39页 |
| ·合成cDNA | 第39-40页 |
| ·PCR扩增 | 第40-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-45页 |
| ·甘油含量的测定 | 第41-42页 |
| ·油红O染色定量分析 | 第42-43页 |
| ·马齿苋多糖对3T3-L1前脂肪细胞分化过程中相关转录因子的影响 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-46页 |
| ·本章小结 | 第46-47页 |
| 第4章 马齿苋多糖改善胰岛素抵抗状态的3T3-L1脂肪细胞的机制探讨 | 第47-60页 |
| ·实验材料 | 第47-51页 |
| ·实验材料 | 第47-48页 |
| ·主要试剂 | 第48-49页 |
| ·主要仪器 | 第49-50页 |
| ·试剂的配制 | 第50-51页 |
| ·实验方法 | 第51-55页 |
| ·葡萄糖氧化酶法检测 | 第51-52页 |
| ·马齿苋多糖对胰岛素抵抗状态的3T3-L1细胞的相关转录因子的影响 | 第52-55页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第52-53页 |
| ·合成cDNA | 第53页 |
| ·PCR扩增 | 第53-55页 |
| ·PCR产物分析 | 第55页 |
| ·结果与分析 | 第55-57页 |
| ·葡萄糖吸收结果分析 | 第55页 |
| ·RT-PCR结果分析 | 第55-57页 |
| ·结果讨论 | 第57-58页 |
| ·本章小结 | 第58-60页 |
| 第5章 马齿苋多糖对Ⅱ型糖尿病大鼠的作用机制探讨 | 第60-88页 |
| ·实验材料 | 第60-64页 |
| ·实验材料 | 第60-61页 |
| ·实验动物 | 第60页 |
| ·饲养条件 | 第60-61页 |
| ·饲料 | 第61页 |
| ·主要试剂 | 第61-63页 |
| ·试剂配置 | 第63页 |
| ·主要仪器 | 第63-64页 |
| ·实验方法 | 第64-72页 |
| ·NIDDM大鼠动物模型的建立与分组 | 第64页 |
| ·模型的建立与分组 | 第64页 |
| ·药物处理 | 第64页 |
| ·动物一般情况观察 | 第64页 |
| ·POP对NIDDM大鼠糖耐量的测定 | 第64-65页 |
| ·液和组织样品的收集 | 第65页 |
| ·血清指标的测定 | 第65页 |
| ·Western bloting | 第65-70页 |
| ·肝脏总蛋白的提取 | 第65-66页 |
| ·蛋白含量的测定 | 第66页 |
| ·蛋白质的变性 | 第66页 |
| ·蛋白电泳 | 第66-68页 |
| ·转膜 | 第68-69页 |
| ·丽春红染色 | 第69页 |
| ·免疫检测 | 第69-70页 |
| ·RT-PCR | 第70-72页 |
| ·肝脏总RNA的提取 | 第70-71页 |
| ·合成cDNA | 第71页 |
| ·PCR扩增 | 第71-72页 |
| ·PCR产物分析 | 第72页 |
| ·结果与分析 | 第72-85页 |
| ·动物一般情况观察 | 第72-75页 |
| ·体重 | 第72-74页 |
| ·饮水量 | 第74-75页 |
| ·饮食量 | 第75页 |
| ·POP对NIDDM大鼠血糖的影响 | 第75-76页 |
| ·POP对NIDDM大鼠糖耐量的测定 | 第76-77页 |
| ·血清指标的测定 | 第77-79页 |
| ·Western bloting | 第79-81页 |
| ·RT-PCR | 第81-85页 |
| ·结果讨论 | 第85-87页 |
| ·本章小结 | 第87-88页 |
| 第6章 结论与展望 | 第88-90页 |
| ·结论 | 第88-89页 |
| ·展望 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-95页 |
| 攻读研究生学位研究成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
