摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
前言 | 第10-17页 |
第一部分 细胞培养 | 第17-22页 |
·实验材料 | 第17页 |
·实验动物 | 第17页 |
·药品与试剂 | 第17页 |
·主要仪器 | 第17页 |
·实验方法 | 第17-19页 |
·溶液配制 | 第17页 |
·细胞培养 | 第17-18页 |
·细胞计数方法 | 第18-19页 |
·实验结果 | 第19页 |
·讨论 | 第19-22页 |
第二部分 原代神经细胞损伤模型的建立以及鱼藤酮诱导剂量的筛选 | 第22-26页 |
·实验材料 | 第22页 |
·药品与试剂 | 第22页 |
·实验仪器 | 第22页 |
·实验方法 | 第22-23页 |
·溶液配制 | 第22页 |
·细胞分组及处理 | 第22页 |
·酶标仪检测 CCK-8 | 第22-23页 |
·统计学分析 | 第23页 |
·实验结果 | 第23-24页 |
·讨论 | 第24-26页 |
第三部分 京尼平苷对神经细胞损伤的保护作用 | 第26-32页 |
·实验材料 | 第26页 |
·药品与试剂 | 第26页 |
·主要仪器 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-28页 |
·溶液配制 | 第26页 |
·细胞分组及处理 | 第26-27页 |
·分光光度计检测 LDH | 第27页 |
·统计学分析 | 第27-28页 |
·实验结果 | 第28-30页 |
·不同浓度京尼平苷对 LDH 释放量的影响 | 第28页 |
·不同浓度京尼平苷预处理 2 小时,0.5nM 鱼藤酮作用 48 小时对 LDH 释放量的影响 | 第28-30页 |
·讨论 | 第30-32页 |
第四部分 京尼平苷抗神经元细胞凋亡的作用 | 第32-41页 |
·实验材料 | 第32页 |
·药品与试剂 | 第32页 |
·主要仪器 | 第32页 |
·实验方法 | 第32-35页 |
·试剂配置 | 第32-33页 |
·细胞分组及处理 | 第33页 |
·提取蛋白 | 第33-34页 |
·Western Blot | 第34-35页 |
·统计学分析 | 第35页 |
·实验结果 | 第35-38页 |
·Bcl-2 蛋白表达结果 | 第35页 |
·Pro-Caspase-3 蛋白表达结果 | 第35页 |
·Cleaved Ccaspase-3 蛋白表达结果 | 第35-38页 |
·讨论 | 第38-41页 |
结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-48页 |
文献综述 | 第48-65页 |
参考文献 | 第57-65页 |
附录:文章缩略词一览表 | 第65-67页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-70页 |
个人简历 | 第70页 |