| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第7-10页 |
| 前言 | 第10-14页 |
| 1 实验材料 | 第14-19页 |
| ·实验仪器 | 第14页 |
| ·实验试剂、耗材 | 第14-16页 |
| ·实验中应用到的相关质粒 | 第16页 |
| ·细胞系 | 第16页 |
| ·主要试剂配制 | 第16-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-27页 |
| ·MEF细胞的分离培养 | 第19-20页 |
| ·分离后的MEF细胞检测支原体 | 第20-21页 |
| ·丝裂霉素C处理MEF细胞 | 第21页 |
| ·293T包装细胞的准备 | 第21-22页 |
| ·质粒转染293T细胞 | 第22页 |
| ·收集病毒,感染HDF细胞 | 第22-23页 |
| ·感染后细胞的诱导培养 | 第23页 |
| ·对形成的克隆活细胞染色 | 第23-24页 |
| ·克隆的挑取、维护和扩大培养 | 第24-25页 |
| ·FiPS克隆的冻存 | 第25页 |
| ·碱性磷酸酶检测 | 第25-26页 |
| ·FiPS细胞表面标志物的检测 | 第26-27页 |
| 3 结果 | 第27-32页 |
| ·MEF细胞支原体检测结果 | 第27-28页 |
| ·脂质体Lipofectamine2000转染293T细胞 | 第28页 |
| ·病毒悬液感染HDF细胞 | 第28页 |
| ·病毒感染后ES样克隆的形成 | 第28-29页 |
| ·TRA-1-60活细胞染色检测结果 | 第29-30页 |
| ·TRA-1-81活细胞染色检测结果 | 第30页 |
| ·HDF细胞重编程为iPS细胞的形态 | 第30-31页 |
| ·碱性磷酸酶检测结果 | 第31-32页 |
| ·FiPS细胞表面标志免疫荧光检测结果 | 第32页 |
| 4 讨论 | 第32-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 综述 | 第38-54页 |
| 诱导的多潜能性:历史、机制和应用 | 第38-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读硕士学位期间主要研究成果 | 第55页 |