致谢 | 第1-5页 |
目录 | 第5-8页 |
摘要 | 第8-9页 |
1 文献综述 | 第9-13页 |
·肠三叶肽 TFF3 分子结构及基因特点 | 第9页 |
·肠三叶肽的分布表达及调节因素 | 第9-10页 |
·TFF3 粘膜保护作用与作用机制 | 第10-11页 |
·TFF3 与粘液糖蛋白的相互作用 | 第10页 |
·诱导肠上皮细胞的迁移并促进细胞的增殖 | 第10页 |
·具有细胞保护功能 | 第10-11页 |
·参与细胞信号的传导 | 第11页 |
·TFF3 的研究进展 | 第11-12页 |
·胃肠道疾病方面 | 第11页 |
·在肿瘤研究方面 | 第11-12页 |
·展望 | 第12-13页 |
2 引言 | 第13-14页 |
3 材料与方法 | 第14-32页 |
·试验试剂与仪器 | 第14-18页 |
·样品采集 | 第14页 |
·菌株和质粒 | 第14页 |
·主要仪器设备 | 第14页 |
·主要试剂及配制 | 第14-18页 |
·重组表达质粒 pET28a-TFF3 的构建 | 第18-27页 |
·猪肠三叶肽 TFF3 基因的克隆 | 第18-20页 |
·质粒 pET28a 的改造 | 第20-26页 |
·重组表达质粒 pET28a-TFF3 的构建 | 第26-27页 |
·重组表达质粒 pET28a-TFF3 转化 E.coli BL21(DE3)pLysS 感受态细胞,IPTG 诱导表达,Western blot 鉴定 | 第27-29页 |
·pET28a-TFF3 转化 E.coli BL21(DE3)pLysS 感受态细胞 | 第27页 |
·IPTG 诱导表达 | 第27-28页 |
·12%SDS-PAGE 鉴定表达结果 | 第28-29页 |
·IPTG 最佳诱导条件的优化 | 第29页 |
·IPTG 最佳诱导浓度的确定 | 第29页 |
·最佳诱导表达时间的确定 | 第29页 |
·重组表达蛋白的纯化、透析与浓缩 | 第29-30页 |
·大量诱导表达 | 第29-30页 |
·蛋白纯化样品的准备 | 第30页 |
·重组表达蛋白的纯化 | 第30页 |
·透析、浓缩 | 第30页 |
·AcTEV 酶酶切重组表达蛋白,Tricine-SDS-PAGE 电泳鉴定 | 第30-32页 |
·AcTEV 酶酶切 | 第30-31页 |
·Tricine-SDS-PAGE 电泳鉴定酶切产物 | 第31-32页 |
4 结果与分析 | 第32-43页 |
·猪肠三叶肽 TFF3 基因的克隆 | 第32-33页 |
·质粒 pET 28a 的改造 | 第33-38页 |
·人 Galectin-1 基因的克隆与纯化 | 第33-34页 |
·人 Galectin-1 基因的酶切 | 第34-35页 |
·对质粒 pET 28a 进行酶切并连接 | 第35页 |
·转化并筛选阳性菌落 | 第35-36页 |
·改造质粒 pET 28a | 第36-38页 |
·重组表达质粒 pET28a-TFF3 的构建 | 第38页 |
·重组表达质粒 pET28a-TFF3 转化 E.coli BL21(DE3)pLysS 感受态细胞,IPTG 诱导表达,Western blot 鉴定 | 第38-41页 |
·pET28a-TFF3 转化 E.coli BL21(DE3)pLysS 感受态细胞 | 第38-39页 |
·IPTG 诱导表达,12%SDS-PAGE 鉴定表达结果 | 第39-40页 |
·Western blot 鉴定结果 | 第40-41页 |
·IPTG 诱导表达条件的优化 | 第41-42页 |
·IPTG 最佳诱导浓度的确定 | 第41页 |
·最佳诱导表达时间的确定 | 第41-42页 |
·重组表达蛋白的纯化、透析与浓缩 | 第42-43页 |
·AcTev 蛋白酶进行酶切,Tricine-SDS-PAGE 电泳鉴定 | 第43页 |
5 讨论与结论 | 第43-46页 |
·讨论 | 第43-45页 |
·猪肠三叶肽 TFF3 基因的克隆 | 第43页 |
·人 Galectin-1 基因的克隆 | 第43-44页 |
·猪肠三叶肽 TFF3 基因的诱导表达和鉴定 | 第44页 |
·猪肠三叶肽 TFF3 重组目的蛋白的纯化与浓缩 | 第44-45页 |
·AcTev 蛋白酶酶切重组目的蛋白 | 第45页 |
·结论 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-50页 |
英文摘要 | 第50-51页 |