| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第一章 序言 | 第10-24页 |
| ·黄曲霉菌 | 第10-11页 |
| ·黄曲霉毒素 | 第11-16页 |
| ·黄曲霉毒素的种类及结构 | 第11-12页 |
| ·黄曲霉毒素的生物合成 | 第12-14页 |
| ·黄曲霉毒素的危害 | 第14-15页 |
| ·黄曲霉毒素的检测分析 | 第15-16页 |
| ·黄曲霉毒素合成的影响因素 | 第16-22页 |
| ·生物因素 | 第16-17页 |
| ·菌株的多样性和菌群竞争 | 第16页 |
| ·起始孢子密度 | 第16-17页 |
| ·环境因素 | 第17-19页 |
| ·温度和湿度 | 第17-18页 |
| ·光照 | 第18页 |
| ·氧化状态 | 第18-19页 |
| ·pH 值 | 第19页 |
| ·化学因素 | 第19-22页 |
| ·碳源和氮源 | 第19-21页 |
| ·脂类信号分子 | 第21-22页 |
| ·代谢组学 | 第22-24页 |
| ·植物代谢组学与微生物代谢组学 | 第22页 |
| ·植物代谢组学与微生物代谢组学的应用 | 第22-24页 |
| 第二章 亚麻酸对黄曲霉菌产毒的影响 | 第24-46页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·菌株 | 第25页 |
| ·培养基 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-34页 |
| ·培养体系 | 第26页 |
| ·外施脂肪酸处理 | 第26-27页 |
| ·黄曲霉菌丝体干重的测定 | 第27页 |
| ·黄曲霉毒素的测定 | 第27-28页 |
| ·培养基中葡萄糖含量的测定 | 第28页 |
| ·黄曲霉菌的氧化状态的测定 | 第28-29页 |
| ·黄曲霉菌中 NOR 含量的测定 | 第29页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第29-31页 |
| ·代谢组学分析 | 第31-34页 |
| ·气质联用仪测黄曲霉菌代谢产物 | 第31-32页 |
| ·液质联用仪测脂肪酸成分 | 第32-33页 |
| ·高效液相色谱分离亚麻酸氧化衍生物 | 第33-34页 |
| ·结果 | 第34-43页 |
| ·外施亚麻酸抑制黄曲霉毒素的合成 | 第34-35页 |
| ·外施多不不饱和脂肪酸抑制黄曲霉毒素的合成 | 第35-36页 |
| ·外施亚麻酸对其他产毒菌株也有抑制作用 | 第36-37页 |
| ·外施亚麻酸加快菌丝体的生长 | 第37-38页 |
| ·外施亚麻酸从起始抑制黄曲霉毒素合成途径 | 第38-39页 |
| ·外施亚麻酸抑制黄曲霉毒素合成相关基因的表达 | 第39页 |
| ·外施亚麻酸促进培养基中葡萄糖的消耗 | 第39-40页 |
| ·外施亚麻酸降低胞内 ROS 含量 | 第40-41页 |
| ·外施亚麻酸会加快黄曲霉菌体内三羧酸循环和磷酸戊糖途径 | 第41-42页 |
| ·亚麻酸氧化物抑制黄曲霉毒素的产生 | 第42-43页 |
| ·结论 | 第43-46页 |
| ·亚麻酸特异性地抑制黄曲霉毒素合成相关基因表达抑制产毒 | 第43-44页 |
| ·亚麻酸可能是通过氧化脂肪酸影响毒素合成 | 第44页 |
| ·亚麻酸可加快三羧酸循环和磷酸戊糖途径 | 第44-46页 |
| 第三章 总结与展望 | 第46-47页 |
| ·总结 | 第46页 |
| ·展望 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-58页 |
| 攻读硕士期间公开发表的论文 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |