首页--医药、卫生论文--肿瘤学论文--造血器及淋巴系肿瘤论文--网状内皮系统肿瘤论文

包裹阿霉素的靶向微泡体外双模式成像及其在超声介导下促进SU-DHL-4细胞凋亡的研究

中文摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
主要缩略词表第12-15页
第一章 前言第15-17页
第二章 综述第17-22页
    2.1 氧化铁纳米颗粒聚集于肿瘤微环境的作用机制第17-18页
    2.2 氧化铁纳米颗粒在肿瘤诊疗中的应用第18-21页
    2.3 存在的问题及展望第21-22页
第三章 RMBs的制备及一般性质的研究第22-36页
    3.1 实验材料与仪器第22-23页
        3.1.1 主要试剂第22页
        3.1.2 主要仪器第22-23页
        3.1.3 主要试剂的配制第23页
    3.2 实验方法第23-28页
        3.2.1 RMBs的制备第23-24页
        3.2.2 RMBs的LSCM成像第24-25页
        3.2.3 RMBs的SEM成像第25-26页
        3.2.4 RMBs的TEM成像第26页
        3.2.5 RMBs粒径及粒径分布测定第26-27页
        3.2.6 RMBs的Zeta电位检测第27页
        3.2.7 RMBs中DOX包封率的测定第27页
        3.2.8 RMBs初步稳定性研究第27-28页
        3.2.9 RMBs中DOX在US介导下释放实验第28页
        3.2.10 统计学分析第28页
    3.3 实验结果第28-33页
        3.3.1 成功制备RMBs第28-29页
        3.3.2 RMBs的LSCM图像第29-30页
        3.3.3 RMBs的SEM及TEM图像第30页
        3.3.4 RMBs粒径分布及Zeta电位第30-31页
        3.3.5 RMBs中DOX包封率的测定第31-32页
        3.3.6 RMBs初步稳定性研究第32页
        3.3.7 RMBs中DOX在超声介导下释放实验第32-33页
    3.4 讨论第33-36页
第四章 RMBs体外超声/磁共振双模式成像第36-39页
    4.1 实验材料与仪器第36页
        4.1.1 主要试剂第36页
        4.1.2 主要仪器第36页
    4.2 实验方法第36页
        4.2.1 RMBs体外超声成像第36页
        4.2.2 RMBs体外磁共振成像第36页
    4.3 实验结果第36-37页
        4.3.1 RMBs体外US图像第36-37页
        4.3.2 RMBs体外MR图像第37页
    4.4 讨论第37-39页
第五章 RMBs在超声介导下对SU-DHL-4细胞凋亡的实验研究第39-53页
    5.1 实验材料与仪器第39-41页
        5.1.1 细胞株第39页
        5.1.2 主要试剂第39页
        5.1.3 主要仪器第39-40页
        5.1.4 主要试剂的配制第40页
        5.1.5 SU-DHL-4细胞株培养第40-41页
    5.2 实验方法第41-45页
        5.2.1 SU-DHL-4细胞最佳接种浓度测定第41页
        5.2.2 DOX对SU-DHL-4细胞半抑制浓度(IC50)测定第41-42页
        5.2.3 RMBs与SU-DHL-4细胞黏附试验第42-43页
        5.2.4 EMBs及US对SU-DHL-4细胞活力的影响第43页
        5.2.5 DAPI染色法观察SU-DHL-4细胞分组处理48h后各组细胞核形态学变化第43-44页
        5.2.6 CCK-8法检测SU-DHL-4细胞分组干预48h后各组细胞活力第44页
        5.2.7 流式细胞术检测SU-DHL-4细胞分组干预48h后各组细胞凋亡第44-45页
        5.2.8 统计学分析第45页
    5.3 实验结果第45-51页
        5.3.1 SU-DHL-4细胞最佳接种浓度测定第45页
        5.3.2 DOX对SU-DHL-4细胞半抑制浓度(IC50)测定第45-46页
        5.3.3 RMBs与SU-DHL-4细胞黏附试验第46-47页
        5.3.4 EMBs及US对SU-DHL-4细胞活力的影响第47页
        5.3.5 DAPI染色法观察SU-DHL-4细胞分组干预48h后各组细胞核形态学变化第47-48页
        5.3.6 CCK-8法检测SU-DHL-4细胞分组干预48h后各组细胞活力第48-49页
        5.3.7 流式细胞术检测SU-DH-4细胞分组干预48h后各组细胞凋亡第49-51页
    5.4 讨论第51-53页
第六章 总结与展望第53-54页
    6.1 总结第53页
    6.2 展望第53-54页
参考文献第54-59页
致谢第59-60页
硕士在读期间发表文章目录第60-61页
作者简介第61页

论文共61页,点击 下载论文
上一篇:胃癌术后出院30天内非计划再入院影响因素的分析
下一篇:Cif效应蛋白通过靶向Cullin-RING泛素连接酶抑制肠癌细胞增殖的研究