| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstracts | 第6-8页 |
| 缩写及符号说明 | 第8-13页 |
| 1 前言 | 第13-24页 |
| ·大豆生长的土壤条件 | 第13-14页 |
| ·土壤中的磷及其对作物的影响 | 第14-16页 |
| ·土壤中磷的状况 | 第14页 |
| ·低磷胁迫对植物的影响 | 第14-15页 |
| ·植物耐低磷胁迫机制的研究 | 第15-16页 |
| ·土壤中的铝及其对作物的影响 | 第16-19页 |
| ·土壤中铝的存在形式 | 第16页 |
| ·铝对植物的毒害作用 | 第16-17页 |
| ·植物的耐铝毒机制 | 第17-19页 |
| ·谷胱甘肽合成代谢与环境胁迫 | 第19-22页 |
| ·(h)GSH的生物合成 | 第20-21页 |
| ·γ-ECS和(h)GSHS基因与植物的抗逆性 | 第21页 |
| ·γ-ECS和(h)GSHS基因的研究进展 | 第21-22页 |
| ·半定量RT-PCR技术的应用 | 第22页 |
| ·研究目的和意义 | 第22-24页 |
| 2 材料和方法 | 第24-32页 |
| ·植物材料 | 第24-25页 |
| ·材料培养方法 | 第24-25页 |
| ·试验技术路线 | 第25-26页 |
| ·试验方法 | 第26-32页 |
| ·γ-ECS和hGSHS酶活性的测定 | 第26页 |
| ·实验试剂 | 第26页 |
| ·仪器设备 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26页 |
| ·实验数据的处理 | 第26页 |
| ·BX10根和叶片γ-ECS和hGSHS基因的克隆 | 第26-31页 |
| ·实验试剂 | 第26-27页 |
| ·实验仪器及设备 | 第27页 |
| ·大豆根和叶片总RNA的提取 | 第27-28页 |
| ·反转录 | 第28-29页 |
| ·引物设计 | 第29页 |
| ·PCR扩增 | 第29页 |
| ·目的片段的回收 | 第29-30页 |
| ·目的片段与PMD18-T载体Vector的连接 | 第30页 |
| ·DNA片段的克隆 | 第30-31页 |
| ·γ-ECS和hGSHS基因的RT-PCR半定量分析 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-43页 |
| ·酶活性的测定结果 | 第32-35页 |
| ·低磷和铝毒胁迫下,大豆γ-ECS活性的变化 | 第32-33页 |
| ·低磷和铝毒胁迫下,大豆hGSHS活性的变化 | 第33-35页 |
| ·基因克隆和基因表达分析 | 第35-43页 |
| ·大豆根和叶片总RNA的质量检测 | 第35页 |
| ·γ-ECS和hGSHS基因中间片段的获得 | 第35-36页 |
| ·γ-ECS和hGSHS基因中间片段的克隆和测序 | 第36-38页 |
| ·γ-ECS和hGSHS基因PCR条件的优化 | 第38-40页 |
| ·RT-PCR最佳退火温度的筛选 | 第38-39页 |
| ·RT-PCR最佳循环次数的筛选 | 第39-40页 |
| ·低磷和铝毒胁迫下γ-ECS和hGSHS基因的半定量表达分析 | 第40-43页 |
| 4 全文讨论与结论 | 第43-51页 |
| ·全文讨论 | 第43-49页 |
| ·谷胱甘肽合成代谢与植物的抗逆性 | 第43-48页 |
| ·低磷和铝毒胁迫下大豆根和叶片中γ-ECS和hGSHS酶活性的比较 | 第44-45页 |
| ·低磷和铝毒胁迫下大豆根和叶片中γ-ECS和hGSHS基因的表达差异 | 第45-47页 |
| ·γ-ECS和hGSHS基因的表达调控 | 第47-48页 |
| ·半定量RT-PCR技术 | 第48-49页 |
| ·全文结论 | 第49页 |
| ·问题与展望 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 附录A | 第59-60页 |
| 附录B | 第60-65页 |
