| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 中文文摘 | 第6-10页 |
| 目录 | 第10-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-30页 |
| ·蜘蛛丝蛋白 | 第14-16页 |
| ·天然蜘蛛丝优越性能 | 第14页 |
| ·蜘蛛丝蛋白的应用前景 | 第14-15页 |
| ·人工蛛丝蛋白的研究 | 第15-16页 |
| ·人工蛛丝蛋白的原核表达及其高密度发酵工艺概况 | 第16-18页 |
| ·原核表达系统及其发酵 | 第16页 |
| ·大肠杆菌高发酵的相关影响因素 | 第16-18页 |
| ·人工蛛丝蛋白的真核表达 | 第18-19页 |
| ·组织工程多孔支架材料 | 第19-22页 |
| ·多孔性支架材料的制备技术 | 第19-21页 |
| ·组织工程支架材料的生物相容性的研究。 | 第21-22页 |
| ·人工生物敷料皮肤创面修复的应用 | 第22-25页 |
| ·生物敷料的种类 | 第22-24页 |
| ·生物敷料的发展趋势及市场潜力 | 第24页 |
| ·生物敷料的优点及作用机理 | 第24-25页 |
| ·组织工程皮肤在皮肤创面修复中的应用 | 第25-26页 |
| ·表皮替代物 | 第25-26页 |
| ·真皮替代物 | 第26页 |
| ·人工复合皮肤 | 第26页 |
| ·皮肤创伤愈合的生物学机制 | 第26-28页 |
| ·成纤维细胞在创伤愈合中的作用 | 第27页 |
| ·生长因子在创伤愈合过程中的作用 | 第27-28页 |
| ·皮肤创面修复结果的评价标准 | 第28页 |
| ·生物敷料和组织工程皮肤展望 | 第28页 |
| ·本研究的背景、主要内容及意义 | 第28-30页 |
| ·本研究的背景材料 | 第28-29页 |
| ·本研究的主要内容 | 第29页 |
| ·本研究的意义 | 第29-30页 |
| 第2章 RGD-重组蛛丝蛋白高密度发酵工艺优化与纯化 | 第30-52页 |
| ·材料 | 第30-32页 |
| ·菌株和重组质粒 | 第30页 |
| ·主要试剂 | 第30页 |
| ·仪器与设备 | 第30-31页 |
| ·培养基与主要试剂 | 第31-32页 |
| ·方法 | 第32-36页 |
| ·pNSR16/BL_(21)(DE_3)pLysS工程菌的重新转化 | 第32-33页 |
| ·蛛丝蛋白基因工程菌的高密度发酵 | 第33-34页 |
| ·发酵过程评价 | 第34-35页 |
| ·蛛丝蛋白基因工程菌目的蛋白的纯化 | 第35-36页 |
| ·结果 | 第36-46页 |
| ·新转化pNSR16/BL_(21)(DE_3)pLysS工程菌的鉴定 | 第36-37页 |
| ·pNSR16/BL_(21)(DE_3)pLysS工程菌的筛选 | 第37-39页 |
| ·摇瓶培养诱导前菌体浓度对蛋白表达的影响 | 第39页 |
| ·pNSR16/BL_(21)(DE_3)pLysS工程菌分批补料高密度发酵 | 第39-42页 |
| ·pNSR32/BL_(21)(DE_3)pLysS工程菌分批补料高密度发酵 | 第42-43页 |
| ·所建立发酵工艺的重复实验 | 第43-44页 |
| ·考马斯亮蓝标准曲线的绘制 | 第44页 |
| ·pNSR16蛋白的纯化 | 第44-45页 |
| ·pNSR32蛋白的纯化 | 第45-46页 |
| ·讨论 | 第46-49页 |
| ·结论 | 第49-52页 |
| 第3章 重组蛛丝蛋白膜材料的组织相容性研究 | 第52-62页 |
| ·材料 | 第52-53页 |
| ·主要材料 | 第52页 |
| ·实验动物 | 第52页 |
| ·主要仪器和器械 | 第52页 |
| ·主要试剂 | 第52-53页 |
| ·方法 | 第53-55页 |
| ·支架制备 | 第53页 |
| ·植入前支架处理 | 第53页 |
| ·创伤模型 | 第53-54页 |
| ·组织学石蜡切片步骤 | 第54页 |
| ·组织学石蜡染色 | 第54页 |
| ·组织学评价 | 第54-55页 |
| ·pNS2、pNSR16支架材料的组织相容性评价 | 第55-56页 |
| ·支架材料形态观察 | 第55页 |
| ·术后大体观察 | 第55页 |
| ·植入材料HE染色结果 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56-57页 |
| ·结论 | 第57-62页 |
| 第4章 重组蛛丝蛋白作为新型生物敷料在皮肤烫伤修复的应用 | 第62-82页 |
| ·材料 | 第62-63页 |
| ·主要材料 | 第62页 |
| ·实验动物饲养 | 第62页 |
| ·主要仪器和器械 | 第62-63页 |
| ·主要试剂 | 第63页 |
| ·方法 | 第63-67页 |
| ·pNSR32和pNSR16蛛丝蛋白敷料制备 | 第63页 |
| ·实验材料的预处理 | 第63页 |
| ·SD大鼠烫伤模型的建立 | 第63-64页 |
| ·手术流程 | 第64页 |
| ·实验分组 | 第64页 |
| ·烫伤修复的评价标准 | 第64页 |
| ·石蜡切片步骤 | 第64-65页 |
| ·组织学切片染色 | 第65页 |
| ·羟脯氨酸含量测定 | 第65-66页 |
| ·bFGF免疫组化检测 | 第66-67页 |
| ·结果 | 第67-71页 |
| ·SD大鼠烫伤模型 | 第67页 |
| ·蛛丝蛋白敷料和胶原敷料的获得 | 第67页 |
| ·术后大体观察 | 第67-68页 |
| ·创面愈合率计算 | 第68页 |
| ·皮肤修复的HE染色结果 | 第68-69页 |
| ·羟脯氨酸含量测定数据分析 | 第69-70页 |
| ·bFGF-2免疫组化检测 | 第70-71页 |
| ·讨论 | 第71-72页 |
| ·结论 | 第72-82页 |
| 结论 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-92页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 个人简历 | 第94-95页 |
