| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-20页 |
| ·植物中的多肽信号分子 | 第8-12页 |
| ·植物磺肽素的研究进展 | 第12-20页 |
| ·PSK-α的发现和命名 | 第12-13页 |
| ·PSK-α的生理效应 | 第13-14页 |
| ·PSK-α的生物鉴定 | 第14页 |
| ·PSK-α的生物合成途径 | 第14-16页 |
| ·PSK-α的作用机制 | 第16-18页 |
| ·PSK-α的应用 | 第18-19页 |
| ·PSK-α的前景展望 | 第19-20页 |
| 2 引言 | 第20-21页 |
| 3 材料与方法 | 第21-32页 |
| ·实验材料 | 第21-22页 |
| ·PSK-α化学合成的实验材料 | 第21页 |
| ·PSK-α生物分析的实验材料 | 第21页 |
| ·小麦幼胚和成熟胚愈伤组织中PSK前体物基因表达分析的实验材料 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-32页 |
| ·PSK-α化学合成的方法 | 第22-23页 |
| ·DMF/SO_3的制取 | 第22页 |
| ·五肽的磺化 | 第22页 |
| ·PSK-α的凝胶层析 | 第22-23页 |
| ·PSK-α生物分析方法 | 第23-29页 |
| ·转DREB基因烟草(NicotianatabacumL.)悬浮细胞系的筛选与培养 | 第23页 |
| ·PSK-α活性分析 | 第23-24页 |
| ·转基因细胞系的分子检测 | 第24-29页 |
| ·烟草悬浮细胞系(BY-2)DNA的提取 | 第24页 |
| ·PCR扩增及琼脂糖凝胶电泳检测 | 第24-26页 |
| ·转基因BY-2 PCR-Southern杂交分析 | 第26-29页 |
| ·小麦幼胚和成熟胚愈伤组织中PSK前体物基因表达分析的实验方法 | 第29-32页 |
| ·愈伤组织的培养 | 第29页 |
| ·Trizol法提取愈伤组织总RNA | 第29-30页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第30页 |
| ·反转录反应 | 第30页 |
| ·Real Time PCR反应 | 第30-32页 |
| 4 结果与分析 | 第32-42页 |
| ·PSK-α的化学合成 | 第32-36页 |
| ·PSK-α的化学护理效应 | 第36-37页 |
| ·添加不同浓度PSK-α的转基因细胞系的筛选与分子检测 | 第37-38页 |
| ·小麦幼胚和成熟胚愈伤组织中PSK前体物基因表达的Real Time PCR分析 | 第38-42页 |
| ·RNA纯度及含量 | 第38-39页 |
| ·Real Time PCR的特异性和重复性 | 第39页 |
| ·Real Time PCR的前体物基因表达量检测 | 第39-41页 |
| ·Real Time PCR的扩增曲线 | 第41-42页 |
| 5 结论与讨论 | 第42-44页 |
| ·PSK-α的化学合成 | 第42-43页 |
| ·PSK-α的生物分析 | 第43页 |
| ·小麦幼胚和成熟胚愈伤组织中PSK前体物基因表达的Real Time PCR分析 | 第43-44页 |
| 参考文献: | 第44-48页 |
| 英文摘要 | 第48-49页 |
