| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一章 材料与方法 | 第17-27页 |
| ·材料 | 第17-19页 |
| ·药品及动物 | 第17页 |
| ·细胞系、细胞培养试剂 | 第17页 |
| ·分子生物学试剂 | 第17页 |
| ·引物 | 第17-18页 |
| ·仪器设备 | 第18-19页 |
| ·动物实验方法 | 第19-24页 |
| ·糖尿病大鼠模型的制备 | 第19页 |
| ·糖尿病大鼠模型的鉴定 | 第19-20页 |
| ·血清ADMA浓度测定 | 第20页 |
| ·提取肝脏线粒体 | 第20页 |
| ·线粒体功能测定 | 第20-21页 |
| ·RT-PCR检测PGC-1α、UCP2转录 | 第21-22页 |
| ·PCR检测线粒体DNA含量 | 第22-23页 |
| ·MDA含量及SOD活性的测定 | 第23页 |
| ·NO含量及NOS活性的测定 | 第23-24页 |
| ·细胞实验方法 | 第24-26页 |
| ·细胞培养及分组 | 第24-25页 |
| ·细胞线粒体的提取 | 第25页 |
| ·细胞匀浆上清的制备 | 第25页 |
| ·细胞培养基中NO和MDA含量测定 | 第25页 |
| ·细胞总RNA的抽提 | 第25-26页 |
| ·细胞基因组DNA的抽提 | 第26页 |
| ·统计学分析 | 第26-27页 |
| 第二章 结果 | 第27-46页 |
| ·动物实验结果 | 第27-39页 |
| ·糖尿病动物模型的鉴定 | 第27页 |
| ·糖尿病大鼠血清ADMA浓度变化 | 第27-28页 |
| ·1型糖尿病大鼠肝脏线粒体功能及生物合成变化 | 第28-30页 |
| ·2型糖尿病大鼠肝脏线粒体功能及生物合成变化 | 第30-33页 |
| ·1型糖尿病大鼠肝脏MDA水平、SOD活性、NO含量以及NOS活性变化 | 第33-34页 |
| ·2型糖尿病大鼠肝脏MDA水平、SOD活性、NO含量以及NOS活性变化 | 第34-35页 |
| ·1型和2型糖尿病大鼠肝脏UCP2基因转录水平变化 | 第35-36页 |
| ·相关性分析结果 | 第36-39页 |
| ·细胞实验结果 | 第39-46页 |
| ·ADMA对H4IIE细胞线粒体琥珀酸脱氢酶活性影响的量效及时效关系 | 第39-40页 |
| ·ADMA对H4IIE细胞线粒体功能和生物合成的影响 | 第40-42页 |
| ·ADMA对H4IIE细胞NOS活性、NO含量、MDA水平和SOD活性的影响 | 第42-44页 |
| ·ADMA对H4IIE细胞UCP2 mRNA转录的影响 | 第44-46页 |
| 第三章 讨论 | 第46-50页 |
| 第四章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
