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血流切应力变化对大鼠颈总动脉重建的影响及其机制

中文摘要第1-7页
英文摘要第7-17页
第1章 血流切应力变化导致颈总动脉重建及其对血管平滑肌细胞凋亡和去分化影响第17-42页
   ·引言第17-19页
   ·实验材料与仪器第19-22页
     ·主要仪器第19-20页
     ·主要试剂第20页
     ·主要溶液成分与配制第20-22页
   ·实验方法第22-28页
     ·大鼠颈总动脉部分分支结扎模型制备第22-23页
     ·动脉血流量和血压的测定第23-25页
     ·血管无载荷状态和零应力状态观测第25页
     ·血管平均流体切应力的确定第25页
     ·颈总动脉的固定与取材第25页
     ·H E 染色第25-26页
     ·Van Gieson 染色第26页
     ·电镜观察第26页
     ·凋亡细胞检测第26-27页
     ·免疫组织化学法第27页
     ·免疫印迹检测第27-28页
     ·统计学处理第28页
   ·结果第28-36页
     ·动脉平均血流量和平均切应力第28-30页
     ·血流切应力变化对颈总动脉组织结构和几何形态的影响第30-32页
     ·血流切应力变化对颈总动脉零应力状态的影响第32-33页
     ·血流切应力变化对平滑肌细胞凋亡的影响第33-34页
     ·血流切应力变化对 VSMC 分化标志蛋白h1-calponin 表达的影响第34-36页
   ·讨论第36-37页
   ·小结第37-38页
 参考文献第38-42页
第2章 血流切应力调节内弹力膜窗影响动脉壁大分子物质聚积第42-58页
   ·前言第42-43页
   ·实验材料及仪器第43-44页
     ·实验仪器第43-44页
     ·试剂第44页
     ·主要溶液成分及配制第44页
   ·实验方法第44-47页
     ·大鼠颈总动脉分支部分结扎模型制备第44页
     ·颈总动脉的血流量和切应力确定第44页
     ·颈总动脉组织结构观察第44页
     ·动脉壁内弹力膜重建的定量评价第44-45页
     ·动脉壁通透性的检测第45-46页
     ·动脉壁内 FN 免疫组织化学和免疫印迹研究第46页
     ·统计学方法第46-47页
   ·结果第47-51页
     ·血流切应力变化对颈总动脉IEL 下层细胞外间质空间的影响第47页
     ·血流切应力变化导致动脉壁内弹力膜重建第47-49页
     ·血流低切应力导致动脉壁中膜的HRP 明显聚积第49-51页
     ·血流低切应力诱导血管壁FN 的表达第51页
   ·讨论第51-54页
   ·小结第54-55页
 参考文献第55-58页
第3章 基质金属蛋白酶在血流切应力变化导致颈总动脉重建中的作用及其机制第58-74页
   ·引言第58-60页
   ·实验材料及仪器第60-61页
     ·实验仪器第60页
     ·试剂第60页
     ·主要溶液成分及配制第60-61页
   ·实验方法第61-62页
     ·动物模型和分组第61页
     ·免疫印迹检测第61页
     ·明胶酶谱法(Gelatin-SDS-PAGE)测定MMPs 活性第61-62页
     ·统计学方法第62页
   ·结果第62-66页
     ·血流切应力变化对颈总动脉脉壁MMPs 活性的影响第62-63页
     ·血流切应力变化对颈总动脉p-Akt 和p21 表达的影响第63-64页
     ·强力霉素抑制了切应力变化诱导的动脉壁MMPs 的活性第64-66页
     ·强力霉素对血管壁p-Akt, p21 和h1-calponin 表达的影响第66页
   ·讨论第66-69页
   ·小结第69-71页
 参考文献第71-74页
【文献综述】第74-97页
 第4章 血流低切应力在动脉粥样硬化发病中的作用第74-97页
   ·引言第74-76页
   ·血流切应力第76-77页
   ·血管平滑肌细胞和内皮细胞相互作用第77-78页
   ·切应力的机械转导机制第78-79页
   ·切应力调节血管的生物学活性第79-84页
     ·炎症第79-80页
     ·一氧化氮(NO)第80-82页
     ·活性氧(Reactive Oxygen Species ROS)第82-84页
   ·切应力与血管通透性第84-85页
     ·扰流直接影响 EC 的完整性第84页
     ·细胞骨架第84-85页
   ·小结第85-87页
  参考文献第87-97页
致谢第97-98页
攻读博士学位期间已完成或发表的学术论文第98页

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