| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 第一章 PGC-1α 的研究及进展 | 第11-19页 |
| ·PGC-1α 的研究进展 | 第11-14页 |
| ·PGC-1α的结构特点 | 第11页 |
| ·生物学特性 | 第11-12页 |
| ·PGC-1α功能研究 | 第12-14页 |
| ·线粒体相关基因的研究进展 | 第14-15页 |
| ·UCPs 的研究进展 | 第14-15页 |
| ·细胞色素c（Cyt-C）与肉碱棕榈酰转移酶(CPT-Ⅰ) | 第15页 |
| ·PGC-1α与线粒体相关基因的关系 | 第15-19页 |
| ·PGC-1α刺激线粒体的增生 | 第15-17页 |
| ·PGC-1α影响适应性产热 | 第17页 |
| ·PGC-1α与脂肪酸的β氧化 | 第17-19页 |
| 第二章 肌卫星细胞生物学特性和体外培养技术的研究 | 第19-23页 |
| ·肌卫星细胞生物学特性 | 第19-21页 |
| ·肌卫星细胞的起源 | 第19页 |
| ·肌卫星细胞多向分化潜能 | 第19-20页 |
| ·肌卫星细胞的激活及调节因素 | 第20-21页 |
| ·肌卫星细胞体外培养技术的研究 | 第21-23页 |
| 实验研究 | 第23-50页 |
| 前言 | 第23-24页 |
| 第三章 猪PGC-1Α及线粒体相关基因组织表达研究 | 第24-34页 |
| ·材料和方法 | 第24-26页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·方法 | 第24-25页 |
| ·PCR 扩增 | 第25-26页 |
| ·凝胶电泳及凝胶成像和定量分析 | 第26页 |
| ·数据分析 | 第26页 |
| ·结果与分析 | 第26-32页 |
| ·各组织提取的RNA | 第26-27页 |
| ·各组织PGC-1α及其β-actin 基因的扩增条带 | 第27页 |
| ·各组织PGC-1α基因mRNA 表达丰度的差异性检验 | 第27-28页 |
| ·各组织 UCP2 及其β-actin 基因的扩增条带 | 第28页 |
| ·各组织UCP2 基因mRNA 表达丰度的差异性检验 | 第28-29页 |
| ·各组织 UCP3 及其β-actin 基因的扩增条带 | 第29页 |
| ·各组织UCP3 基因mRNA 表达丰度的差异性检验 | 第29-30页 |
| ·各组织Cyt-c 及β-actin 基因的扩增条带 | 第30页 |
| ·各组织Cyt-c 基因mRNA 表达丰度的差异性检验 | 第30-31页 |
| ·各组织 CPT-Ⅰ及β-actin 基因的扩增条带 | 第31页 |
| ·各组织CPT-Ⅰ基因mRNA 表达丰度的差异性检验 | 第31-32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| 第四章 猪骨骼肌卫星细胞的分离培养和鉴定 | 第34-42页 |
| ·材料和方法 | 第34-37页 |
| ·材料 | 第34-35页 |
| ·方法 | 第35-37页 |
| ·结果 | 第37-40页 |
| ·原代培养肌卫星细胞动态观察 | 第37-38页 |
| ·三种酶消化法比较 | 第38-39页 |
| ·生长曲线绘制 | 第39页 |
| ·肌卫星细胞鉴定 | 第39页 |
| ·细胞提取RNA 的完整性 | 第39-40页 |
| ·RT-PCR 检测成肌细胞标志基因表达 | 第40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 第五章 LEPTIN 对猪成肌细胞中PGC-1Α和UCPS MRNA 表达的影响 | 第42-50页 |
| ·材料和方法 | 第42-45页 |
| ·材料 | 第42-43页 |
| ·方法 | 第43-45页 |
| ·结果与分析 | 第45-48页 |
| ·成肌细胞培养的形态学观察 | 第45页 |
| ·成肌细胞提取RNA 的完整性 | 第45-46页 |
| ·Leptin 对PGC-1a 表达的影响 | 第46页 |
| ·Leptin 对UCP2、UCP3 表达的影响 | 第46-48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 附录 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59页 |
