| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-11页 |
| 1 绪论 | 第11-16页 |
| ·问题的提出及研究意义 | 第11-12页 |
| ·国内外研究现状 | 第12-14页 |
| ·流体力学环境对血管内皮细胞的影响 | 第12-13页 |
| ·组织工程血管构建的研究现状 | 第13-14页 |
| ·本文研究的目的和研究内容 | 第14-16页 |
| ·本文研究的目的 | 第14页 |
| ·本文研究的主要内容 | 第14-16页 |
| 2 人脐静脉内皮细胞的分离、培养和鉴定 | 第16-25页 |
| ·引言 | 第16页 |
| ·人脐静脉内皮细胞的分离、培养 | 第16-18页 |
| ·实验试剂与材料 | 第16-17页 |
| ·实验器材 | 第17页 |
| ·细胞培养的设备 | 第17页 |
| ·HUVEC的分离过程 | 第17-18页 |
| ·HUVEC的培养过程 | 第18页 |
| ·人脐静脉内皮细胞的形态学观察和生长状况的检测 | 第18-22页 |
| ·HUVEC的形态学观察 | 第18-21页 |
| ·HUVEC生长状况的检测 | 第21-22页 |
| ·人脐静脉内皮细胞的鉴定 | 第22-23页 |
| ·免疫学鉴定方法 | 第22-23页 |
| ·鉴定结果 | 第23页 |
| ·本章小结 | 第23-25页 |
| 3 去内皮细胞层血管的制备 | 第25-31页 |
| ·引言 | 第25页 |
| ·超低温方法处理兔颈总动脉血管 | 第25-26页 |
| ·实验试剂与材料 | 第25页 |
| ·实验器材 | 第25-26页 |
| ·处理过程 | 第26页 |
| ·超低温处理除去兔颈总动脉血管内皮细胞的鉴定 | 第26-28页 |
| ·硝酸银染色 | 第26-27页 |
| ·HE染色 | 第27-28页 |
| ·扫描电镜检测 | 第28页 |
| ·超低温处理除去兔颈总动脉血管内皮细胞鉴定的结果 | 第28页 |
| ·本章小结 | 第28-31页 |
| 4 流动培养模型的建立 | 第31-35页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·两种流动培养模型(flow chamber)的建立 | 第31-34页 |
| ·平板脉动层流培养模型的结构与组成 | 第32页 |
| ·平板脉动层流培养模型中流场的设计与剪切力的计算 | 第32-33页 |
| ·脉动灌注培养模型的结构与组成 | 第33页 |
| ·脉动灌注培养模型中流场的设计与剪切力的计算 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34页 |
| ·本章小结 | 第34-35页 |
| 5 成梯度增加的流动剪切力对人脐静脉内皮细胞粘附性的影响 | 第35-49页 |
| ·引言 | 第35-37页 |
| ·实验方法 | 第37-39页 |
| ·在明胶基质上种植人脐静脉内皮细胞 | 第37-38页 |
| ·明胶基质上人脐静脉内皮细胞粘附性的测定 | 第38-39页 |
| ·实验结果 | 第39-45页 |
| ·不同加载水平和加载时间的流动剪切力对内皮细胞粘附性的影响 | 第39-41页 |
| ·单一加载和梯度加载流动剪切力对内皮细胞粘附性的影响 | 第41-43页 |
| ·不同方式的梯度加载流动剪切力对内皮细胞粘附性的影响 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| ·本章小结 | 第47-49页 |
| 6 成梯度增加的流动剪切力对血管内皮化的影响 | 第49-60页 |
| ·引言 | 第49-51页 |
| ·内皮细胞的种植 | 第51-52页 |
| ·实验材料 | 第51页 |
| ·在去内皮细胞的RCCA上种植HUVEC的方法 | 第51-52页 |
| ·种植HUVEC的结果鉴定 | 第52页 |
| ·梯度增加的流动剪切力对内皮细胞耐受剪切力的驯化 | 第52-54页 |
| ·实验方案 | 第53页 |
| ·实验结果 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-55页 |
| ·本章小结 | 第55-60页 |
| 7 结论与展望 | 第60-62页 |
| ·主要结论 | 第60-61页 |
| ·后续研究工作的展望 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 附: | 第68-71页 |
| 1 脉动灌注培养模型中实验参数R(血管半径)的推算 | 第68-69页 |
| 2 蠕动泵转数与输出的流量和提供的剪切力的对应关系 | 第69-70页 |
| 3 作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第70页 |
| 4 作者在攻读硕士学位期间申请的专利项目 | 第70页 |
| 5 作者在攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第70-71页 |
