| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-19页 |
| 第一部分 水稻高效遗传转化受体系统的建立 | 第19-30页 |
| ·实验材料与方法 | 第19页 |
| ·实验材料 | 第19页 |
| ·培养基 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19页 |
| ·结果与分析 | 第19-28页 |
| ·成熟胚愈伤组织的获得 | 第19-20页 |
| ·水稻愈伤组织的诱导 | 第20-23页 |
| ·不同培养基对愈伤组织诱导的影响 | 第20页 |
| ·不同基因型水稻愈伤组织诱导的差异 | 第20-23页 |
| ·不同激素种类和浓度对愈伤组织诱导的影响 | 第23页 |
| ·愈伤组织的继代培养 | 第23-26页 |
| ·培养基种类对水稻愈伤组织继代培养的影响 | 第23页 |
| ·渗透调节对愈伤组织继代的影响 | 第23-26页 |
| ·愈伤组织的分化 | 第26-28页 |
| ·预分化培养对水稻愈伤组织分化率的影响 | 第26页 |
| ·不同水稻品种的分化率 | 第26-28页 |
| ·讨论 | 第28-30页 |
| ·水稻遗传转化外植体的选择 | 第28页 |
| ·水稻成熟胚愈伤组织的诱导 | 第28页 |
| ·水稻愈伤组织的继代 | 第28页 |
| ·水稻愈伤组织的分化 | 第28-30页 |
| 第二部分 基因枪法和农杆菌介导法的遗传转化 | 第30-50页 |
| ·材料和方法 | 第30-35页 |
| ·受体材料 | 第30页 |
| ·转化所用的质粒和菌种 | 第30-31页 |
| ·培养基 | 第31页 |
| ·仪器设备 | 第31页 |
| ·方法 | 第31-35页 |
| ·水稻愈伤组织对选择剂Basta的抗性测定 | 第31页 |
| ·基因枪法转化 | 第31-33页 |
| ·农杆菌介导的转化 | 第33页 |
| ·水稻愈伤组织转化后的葡萄糖苷酸酶(Gus)活性组织化学检测 | 第33-34页 |
| ·转基因植株的PCR检测 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-48页 |
| ·水稻愈伤组织对Basta的敏感性测定 | 第35-38页 |
| ·基因枪法转化水稻的研究 | 第38-40页 |
| ·不同射击距离对转化效率的影响 | 第38页 |
| ·枪击次数对转化效率的影响 | 第38-40页 |
| ·农杆菌介导的转化研究 | 第40-48页 |
| ·不同侵染时间对农杆菌转化的影响 | 第40页 |
| ·不同品种对LBA4404敏感性测定 | 第40页 |
| ·不同的选择方式对水稻转化的影响 | 第40-44页 |
| ·农杆菌介导法的转化效率 | 第44页 |
| ·农杆菌介导法获得的转Bt基因植株主要农艺性状表现 | 第44-48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| ·基因枪法的遗传转化 | 第48页 |
| ·农杆菌介导法的遗传转化 | 第48页 |
| ·关于GUS组织化学染色 | 第48-49页 |
| ·试验的过程中存在的不足 | 第49页 |
| ·展望 | 第49-50页 |
| 第三部分 结论 | 第50-52页 |
| ·优化了吉林省水稻主栽的水稻品种(系)成熟胚再生系统 | 第50页 |
| ·水稻愈伤组织对Basta进行敏感性测定 | 第50页 |
| ·用GUS基因的瞬间表达研究优化了基因枪转化的参数 | 第50-51页 |
| ·根据农杆菌侵染后愈伤组织的状态优化农杆菌介导的遗传转化条件 | 第51页 |
| ·获得了转Bt基因的转基因水稻植株 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 图版说明 | 第56-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
