| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-41页 |
| ·生物材料及生物相容性 | 第12-14页 |
| ·生物材料 | 第12-13页 |
| ·生物相容性 | 第13-14页 |
| ·生物材料表面的蛋白吸附行为 | 第14-34页 |
| ·蛋白质与材料表面的相互作用 | 第14-17页 |
| ·参与材料表面吸附的常见蛋白质 | 第17-20页 |
| ·生物材料表面蛋白吸附行为的研究方法 | 第20-28页 |
| ·生化分析法 | 第21-22页 |
| ·衰减全反射傅里叶变换红外光谱(ATR-FTIR) | 第22-23页 |
| ·原子力显微镜(AFM) | 第23-24页 |
| ·表面等离子共振(SPR) | 第24-25页 |
| ·带衰减检测的石英晶体微天平技术(QCM-D技术) | 第25-28页 |
| ·蛋白吸附的模型简述 | 第28-31页 |
| ·Langmir模型 | 第28-29页 |
| ·简单颗粒模型 | 第29页 |
| ·扩散颗粒模型 | 第29-31页 |
| ·蛋白吸附动力学 | 第31-34页 |
| ·蛋白质的传递 | 第31页 |
| ·蛋白质的吸附 | 第31-32页 |
| ·吸附蛋白质的变化 | 第32-33页 |
| ·交换反应 | 第33页 |
| ·解吸反应 | 第33-34页 |
| ·QCM-D技术在生物材料表面蛋白吸附的研究进展 | 第34-39页 |
| ·QCM-D技术用于实时动态检测蛋白在材料表面的吸附质量与厚度 | 第34-36页 |
| ·QCM-D技术用于实时检测生物材料表面蛋白的粘弹性的变化 | 第36-37页 |
| ·QCM-D技术用于定性研究蛋白的吸附动力学 | 第37-38页 |
| ·QCM-D技术用于蛋白吸附解吸的比例 | 第38-39页 |
| ·研究依据及设计思路 | 第39-41页 |
| 第二章 常用生物材料白蛋白吸附性能的QCM-D技术研究 | 第41-66页 |
| ·QCM-D技术与传统蛋白吸附质量检测技术的对比 | 第42-46页 |
| ·实验部分 | 第42-45页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第42页 |
| ·传统的考马斯亮蓝染色法测蛋白吸附质量 | 第42-44页 |
| ·QCM-D技术测蛋白吸附质量 | 第44-45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-46页 |
| ·疏水性高分子和天然多糖材料的白蛋白吸附行为研究 | 第46-60页 |
| ·实验部分 | 第46-48页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第46页 |
| ·QCM晶片表面成膜及膜的表征 | 第46-47页 |
| ·材料表面形貌的原子力显微镜表征 | 第47页 |
| ·水相接触角测定 | 第47页 |
| ·材料表面水化过程的QCM研究 | 第47页 |
| ·材料表面白蛋白吸附实验 | 第47-48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-60页 |
| ·成膜条件及膜的表征 | 第48-50页 |
| ·材料的水相接触角 | 第50-51页 |
| ·材料水合过程的QCM-D实验 | 第51-54页 |
| ·各种材料表面的白蛋白吸附行为 | 第54-57页 |
| ·白蛋白在材料上吸附动力学讨论 | 第57-60页 |
| ·长时间吸附的白蛋白层粘弹性的变化 | 第60-65页 |
| ·实验部分 | 第60-61页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第60页 |
| ·空金片和高分子表面长时间白蛋白吸附OCM-D测试 | 第60-61页 |
| ·结果与讨论 | 第61-65页 |
| ·蛋白吸附层随时间的粘弹性的定性变化 | 第61-63页 |
| ·蛋白吸附层随时间的粘弹性变化定量讨论 | 第63-65页 |
| ·本章小结 | 第65-66页 |
| 第三章 以PLA为模型的多种蛋白吸附行为研究 | 第66-96页 |
| ·BSA、I型胶原和纤维蛋白原在PLA表面的吸附研究 | 第66-75页 |
| ·实验部分 | 第66-68页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第66-67页 |
| ·PLA表面不同浓度BSA的吸附 | 第67-68页 |
| ·PLA表面不同种类蛋白吸附 | 第68页 |
| ·不同种蛋白的吸附形貌的AFM观察 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-75页 |
| ·不同浓度白蛋白在PLA表面吸附行为 | 第68-71页 |
| ·三种蛋白在PLA表面吸附行为 | 第71-75页 |
| ·BSA与纤维蛋白原在PLA表面竞争吸附研究 | 第75-84页 |
| ·实验部分 | 第75-76页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第75页 |
| ·PLA表面白蛋白与纤维蛋白原相互作用的QCM-D检测 | 第75-76页 |
| ·结果与讨论 | 第76-84页 |
| ·先吸附白蛋白,后吸附纤维蛋白原的吸附行为 | 第76-78页 |
| ·先吸附纤维蛋白原,后吸附白蛋白的吸附行为 | 第78-79页 |
| ·两种蛋白混合吸附性能 | 第79-84页 |
| ·动态循环下聚乳酸表面白蛋白吸附QCM-D研究 | 第84-87页 |
| ·实验部分 | 第84-85页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第84页 |
| ·动态循环下聚乳酸表面白蛋白吸附QCM-D实验 | 第84-85页 |
| ·结果与讨论 | 第85-87页 |
| ·静态和动态循环下PLA表面白蛋白吸附的对比 | 第85-86页 |
| ·不同流速下PLA表面白蛋白吸附量比较 | 第86-87页 |
| ·PLA表面胺解对白蛋白吸附影响 | 第87-94页 |
| ·实验部分 | 第87-89页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第87页 |
| ·PLA膜表面胺解实验 | 第87-88页 |
| ·PLA胺解膜的表征 | 第88页 |
| ·PLA膜改性前后白蛋白吸附QCM-D检测 | 第88-89页 |
| ·结果与讨论 | 第89-94页 |
| ·胺解后PLA膜的测试表征分析 | 第89-91页 |
| ·氨基对水合过程和蛋白吸附影响讨论 | 第91-94页 |
| ·本章小结 | 第94-96页 |
| 第四章 PCL/CS共混微相分离体系的蛋白吸附性能研究 | 第96-103页 |
| ·实验部分 | 第96-98页 |
| ·主要实验原料和仪器设备 | 第96-97页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜的制备 | 第97页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜的AFM表征 | 第97页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜水化作用的QCM-D检测 | 第97-98页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜蛋白吸附的QCM-D检测 | 第98页 |
| ·结果与讨论 | 第98-102页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜的微观形貌 | 第98-99页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜水化作用的讨论 | 第99-100页 |
| ·Chitosan/PCL不同比例共混膜蛋白吸附行为讨论 | 第100-102页 |
| ·本章小结 | 第102-103页 |
| 第五章 全文总结 | 第103-106页 |
| ·结论 | 第103-104页 |
| ·主要创新点 | 第104-105页 |
| ·不足与展望 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-115页 |
| 在学期间发表论文清单 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
