| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-28页 |
| 1 前言 | 第13页 |
| 2 壳聚糖的抑菌性能 | 第13-14页 |
| ·壳聚糖 | 第13-14页 |
| ·壳聚糖衍生物 | 第14页 |
| 3 影响壳聚糖及衍生物抑菌活性的因素 | 第14-19页 |
| ·晶型 | 第14-15页 |
| ·分子量(Mw) | 第15页 |
| ·脱乙酰度(D.D) | 第15页 |
| ·酸溶剂 | 第15-16页 |
| ·浓度 | 第16页 |
| ·离子强度 | 第16页 |
| ·溶液pH值 | 第16-17页 |
| ·金属离子 | 第17页 |
| ·菌株 | 第17页 |
| ·温度 | 第17页 |
| ·EDTA | 第17-18页 |
| ·菌体培养时间 | 第18页 |
| ·壳聚糖储存温度和时间 | 第18页 |
| ·衍生化 | 第18-19页 |
| ·其他因素 | 第19页 |
| 4 壳聚糖抑菌机理研究进展 | 第19-20页 |
| 5 本课题的设计思路 | 第20-21页 |
| 参考文献 | 第21-28页 |
| 第二章 壳聚糖衍生物的制备及其抑菌性能的研究 | 第28-40页 |
| 引言 | 第28页 |
| 1 实验部分 | 第28-31页 |
| ·实验材料和仪器 | 第28-29页 |
| ·实验材料 | 第28页 |
| ·菌株 | 第28页 |
| ·实验仪器 | 第28-29页 |
| ·壳聚糖衍生物的制备 | 第29-30页 |
| ·O-羧甲基壳聚糖(OCMC)的制备 | 第29页 |
| ·壳聚糖-金属配合物的制备 | 第29页 |
| ·壳聚糖-碘配合物的制备 | 第29页 |
| ·席夫碱壳聚糖的制备 | 第29-30页 |
| ·壳聚糖衍生物的结构表征 | 第30-31页 |
| ·红外光谱测定 | 第30页 |
| ·热重-差热分析 | 第30页 |
| ·紫外吸收光谱测定 | 第30页 |
| ·碘离子含量的测定 | 第30页 |
| ·壳聚糖衍生物的分子量测定 | 第30页 |
| ·壳聚糖衍生物的水溶性测定 | 第30页 |
| ·壳聚糖衍生物的氨基含量和取代度测定 | 第30-31页 |
| ·壳聚糖及衍生物的抑菌活性测定 | 第31页 |
| 2 结果与讨论 | 第31-37页 |
| ·壳聚糖衍生物结构和性质分析 | 第31-36页 |
| ·红外光谱 | 第31-34页 |
| ·热重—差热 | 第34-35页 |
| ·紫外吸收光谱及金属和碘离子的吸附量 | 第35页 |
| ·壳聚糖及其衍生物的物化性质 | 第35-36页 |
| ·壳聚糖及衍生物的抑菌活性 | 第36-37页 |
| 3 小结 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-40页 |
| 第三章 壳寡糖和壳聚糖对细胞作用位点的研究 | 第40-50页 |
| 引言 | 第40页 |
| 1 实验部分 | 第40-42页 |
| ·实验材料和仪器 | 第40页 |
| ·实验材料 | 第40页 |
| ·实验仪器 | 第40页 |
| ·壳聚糖体外抑菌实验 | 第40-41页 |
| ·激光共聚焦荧光显微观察 | 第41-42页 |
| ·异硫氰酸荧光素(FITC)标记的壳聚糖的制备 | 第41页 |
| ·FITC-标记壳聚糖与E.coli的共培养 | 第41-42页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察 | 第42页 |
| 2 结果与讨论 | 第42-47页 |
| ·壳聚糖的抑菌性能及MIC的测定 | 第42-44页 |
| ·FITC-标记壳聚糖与受试细菌的作用 | 第44-46页 |
| ·壳聚糖和壳寡糖对细菌细胞的作用位点 | 第46-47页 |
| 3 小结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第四章 壳寡糖对细菌质粒DNA的影响 | 第50-61页 |
| 引言 | 第50页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第50-51页 |
| ·实验材料 | 第50页 |
| ·实验仪器 | 第50-51页 |
| 2 实验方法 | 第51-52页 |
| ·实验用缓冲液的配制 | 第51页 |
| ·紫外吸收光谱 | 第51页 |
| ·拉曼光谱 | 第51页 |
| ·壳寡糖对EB-DNA体系荧光强度的影响 | 第51页 |
| ·NaH_2PO_4-Na_2HPO_4浓度对壳寡糖-EB-DNA体系荧光强度的影响 | 第51-52页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第52页 |
| ·壳寡糖与DNA相互作用的电化学研究 | 第52页 |
| 3 结果与讨论 | 第52-58页 |
| ·壳寡糖与DNA相互作用的紫外吸收光谱研究 | 第52-54页 |
| ·拉曼光谱 | 第54页 |
| ·壳寡糖对EB-DNA荧光光谱的影响 | 第54-56页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第56-57页 |
| ·壳寡糖与DNA相互作用的电化学研究 | 第57-58页 |
| 4 小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 第五章 壳聚糖对细菌细胞膜的影响 | 第61-83页 |
| 前言 | 第61页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第61-62页 |
| ·主要仪器 | 第61页 |
| ·试剂与菌种 | 第61-62页 |
| 2 实验部分 | 第62-65页 |
| ·细胞膜的完整性 | 第62页 |
| ·细菌细胞膜渗透性 | 第62页 |
| ·外膜(OM)渗透性分析 | 第62-63页 |
| ·内膜(IM)渗透性分析 | 第63页 |
| ·TEM观察 | 第63页 |
| ·E.coli和St.aureus的培养及与壳聚糖溶液的作用 | 第63页 |
| ·TEM观察壳聚糖对E.coli和St.aureus超微结构的影响 | 第63页 |
| ·细胞质膜势分析 | 第63页 |
| ·壳聚糖对细胞膜蛋白荧光的影响 | 第63-64页 |
| ·牛血清白蛋白(BSA)与壳聚糖相互作用 | 第64页 |
| ·壳聚糖和合成卵磷脂间的相互作用 | 第64-65页 |
| ·卵磷脂膜的纯化 | 第64页 |
| ·脂质体与壳聚糖相互作用的表征 | 第64-65页 |
| ·红外吸收光谱 | 第64页 |
| ·热重-差热 | 第64页 |
| ·电化学分析 | 第64-65页 |
| 3 结果与讨论 | 第65-79页 |
| ·细胞膜的完整性 | 第65-67页 |
| ·细胞膜渗透性 | 第67-68页 |
| ·外膜渗透性分析 | 第68-70页 |
| ·内膜渗透性分析 | 第70-71页 |
| ·TEM | 第71-72页 |
| ·细胞质膜去极化分析 | 第72-73页 |
| ·壳聚糖对细胞膜蛋白的影响 | 第73-75页 |
| ·BSA与壳聚糖相互作用的紫外光谱 | 第75-76页 |
| ·壳聚糖和合成卵磷脂间的相互作用 | 第76-79页 |
| ·红外光谱 | 第76-77页 |
| ·热重-差热(TG-DTG) | 第77-78页 |
| ·循环伏安法 | 第78-79页 |
| 4 小结 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-83页 |
| 第六章 壳聚糖对真菌黑曲霉抑制机理的研究 | 第83-94页 |
| 引言 | 第83-84页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第84页 |
| ·主要仪器 | 第84页 |
| ·实验材料 | 第84页 |
| ·不同分子量壳聚糖 | 第84页 |
| ·菌种 | 第84页 |
| ·麦芽汁培养基 | 第84页 |
| 2 实验方法 | 第84-85页 |
| ·壳聚糖对黑曲霉体外抑菌实验 | 第84-85页 |
| ·抑菌率计算 | 第85页 |
| ·壳聚糖对黑曲霉超微结构影响 | 第85页 |
| ·激光共聚焦荧光显微观察 | 第85页 |
| 3 结果与讨论 | 第85-91页 |
| ·壳聚糖分子量对抑菌性能的影响 | 第85-86页 |
| ·壳聚糖浓度对抑菌性能的影响 | 第86-87页 |
| ·不同分子量、不同浓度壳聚糖对黑曲霉的抑菌率 | 第87-88页 |
| ·pH值的影响 | 第88-89页 |
| ·TEM | 第89页 |
| ·FITC-标记壳聚糖与黑曲霉的作用 | 第89-90页 |
| ·壳聚糖对黑曲霉抑菌机理探讨 | 第90-91页 |
| 4 小结 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-94页 |
| 附录:硕士期间发表的论文 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
