| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第7-12页 |
| 材料与仪器 | 第12-15页 |
| 实验方法 | 第15-42页 |
| 第一部分 ApoA-I的分离纯化及鉴定 | 第15-21页 |
| 一 冷乙醇法沉淀分离ApoA-I | 第15页 |
| 二 制备ApoA-I的SDS-PAGE鉴定 | 第15-16页 |
| 三 制备ApoA-I的Western Blot鉴定 | 第16-18页 |
| 四 制备ApoA-I的生物活性鉴定 | 第18-21页 |
| 第二部分 ApoA-I对THP-1细胞趋化的影响 | 第21-30页 |
| 一 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞释放MCP-1的影响 | 第21-23页 |
| 二 ApoA-I对oxLDL诱导的THP-1细胞趋化的影响 | 第23-30页 |
| 第三部分 ApoA-I对THP-1细胞粘附的影响 | 第30-37页 |
| 一 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞释放可溶性粘附分子的影响 | 第30-35页 |
| 二 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞膜上粘附分子表达的影响 | 第35-37页 |
| 1 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞膜上CD11b表达的影响 | 第35页 |
| 2 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞膜上VCAM-1表达的影响 | 第35-37页 |
| 第四部分 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞活化的影响 | 第37-39页 |
| 一 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞膜CD14(mCD14)的影响 | 第37页 |
| 二 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞NFκB活化的影响 | 第37-39页 |
| 第五部分 ApoA-I对LPS诱导全身性炎症兔血浆HDL炎症指数的影响 | 第39-41页 |
| 一 实验动物处理 | 第39页 |
| 二 高密度脂蛋白胆固醇检测 | 第39-40页 |
| 三 无细胞法检测兔血浆HDL炎症指数 | 第40-41页 |
| 统计学分析 | 第41-42页 |
| 实验结果 | 第42-56页 |
| 第一部分 ApoA-I的分离纯化及鉴定 | 第42-44页 |
| 一 ApoA-I的SDS-PAGE电泳和Western Blot鉴定 | 第42页 |
| 二 制备ApoA-I的生物活性鉴定 | 第42-44页 |
| 第二部分 ApoA-I对THP-1细胞趋化的影响 | 第44-49页 |
| — ApoA-I减少LPS诱导的THP-1细胞释放MCP-1 | 第44页 |
| 二 ApoA-I抑制oxLDL诱导的THP-1细胞趋化 | 第44-49页 |
| 1 内皮细胞的鉴定 | 第44-46页 |
| 2 oxLDL的鉴定 | 第46-47页 |
| 3 ApoA-I抑制oxLDL诱导的THP-1细胞趋化 | 第47-49页 |
| 第三部分 ApoA-I对THP-1细胞粘附的影响 | 第49-53页 |
| 一 ApoA-I抑制LPS诱导的THP-1细胞释放可溶性粘附分子 | 第49-50页 |
| 二 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞膜上粘附分子表达的影响 | 第50-53页 |
| 1 ApoA-I抑制LPS诱导的THP-1细胞膜上CD11b表达 | 第50-52页 |
| 2 ApoA-I抑制LPS诱导的THP-1细胞膜上VCAM-1表达 | 第52-53页 |
| 第四部分 ApoA-I对LPS诱导的THP-1细胞活化的影响 | 第53-55页 |
| 一 ApoA-I抑制LPS诱导的THP-1细胞膜CD14(mCD14)的表达 | 第53-54页 |
| 二 ApoA-I抑制LPS诱导的THP-1细胞NFκB活化 | 第54-55页 |
| 第五部分 ApoA-I对LPS诱导全身性炎症兔血浆HDL炎症指数的影响 | 第55-56页 |
| 一 ApoA-I降低LPS诱导的全身性炎症兔血浆HDL的炎症指数 | 第55-56页 |
| 讨论 | 第56-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 研究方向 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 综述 | 第77-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
