| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-12页 |
| 1 绪言 | 第12-22页 |
| ·青霉素酰化酶 | 第12-20页 |
| ·青霉素酰化酶的来源及分类 | 第12页 |
| ·青霉素G酰化酶的结构及催化机理 | 第12-13页 |
| ·产青霉素酰化酶菌株的发酵条件研究 | 第13页 |
| ·产青霉素酰化酶菌株的发酵动力学研究 | 第13-14页 |
| ·青霉素酰化酶的分离纯化 | 第14-15页 |
| ·青霉素酰化酶的固定化 | 第15-19页 |
| ·青霉素酰化酶的应用 | 第19-20页 |
| ·论文的研究目的意义及内容 | 第20-22页 |
| ·论文的研究目的意义 | 第20页 |
| ·论文的研究内容 | 第20-22页 |
| 2 重组巨大芽孢杆菌产PGA酰化酶的发酵条件优化 | 第22-33页 |
| ·引言 | 第22页 |
| ·材料与方法 | 第22-25页 |
| ·菌种 | 第22-23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·主要仪器 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-24页 |
| ·单因素试验 | 第24-25页 |
| ·响应面试验 | 第25页 |
| ·结果与分析 | 第25-32页 |
| ·单因素试验结果与分析 | 第25-28页 |
| ·响应面试验结果与分析 | 第28-31页 |
| ·响应面分析 | 第31-32页 |
| ·验证试验 | 第32页 |
| ·小结 | 第32-33页 |
| 3 基于遗传算法建立重组巨大芽孢杆菌的分批发酵动力学模型 | 第33-43页 |
| ·引言 | 第33-34页 |
| ·材料与方法 | 第34-36页 |
| ·菌种 | 第34页 |
| ·主要的仪器与试剂 | 第34页 |
| ·培养基 | 第34页 |
| ·生长曲线测定方法 | 第34-35页 |
| ·PGA的活力测定方法 | 第35页 |
| ·总糖的测定(DNS法) | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36页 |
| ·种子制备 | 第36页 |
| ·分批发酵实验 | 第36页 |
| ·实验数据的获取 | 第36页 |
| ·数据处理 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-42页 |
| ·重组巨大芽孢杆菌产PGA发酵过程代谢变化特征 | 第36-37页 |
| ·菌体生长动力学模型 | 第37-38页 |
| ·PGA合成动力学 | 第38-40页 |
| ·基质消耗动力学 | 第40-42页 |
| ·模型的验证 | 第42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| 4 PGA的分离纯化 | 第43-49页 |
| ·引言 | 第43页 |
| ·材料与方法 | 第43-44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| ·主要试剂 | 第44页 |
| ·相关试剂的配制 | 第44页 |
| ·实验方法 | 第44-46页 |
| ·粗酶液制备 | 第44页 |
| ·酶活测定方法 | 第44页 |
| ·PGA比活力及相对酶活的定义 | 第44-45页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第45-46页 |
| ·PGA的纯化工艺 | 第46页 |
| ·结果与分析 | 第46-48页 |
| ·超滤纯化效果 | 第46-47页 |
| ·硫酸铵除杂结果 | 第47页 |
| ·浓缩除盐 | 第47页 |
| ·PGA纯化总结 | 第47-48页 |
| ·小结 | 第48-49页 |
| 5 PGA的固定化 | 第49-60页 |
| ·引言 | 第49-50页 |
| ·材料与方法 | 第50页 |
| ·实验材料 | 第50页 |
| ·试验方法 | 第50-52页 |
| ·单因素试验 | 第50-51页 |
| ·酶活测定方法及定义 | 第51页 |
| ·酶活力回收率 | 第51页 |
| ·响应面试验 | 第51页 |
| ·酶促反应适宜条件的考察 | 第51-52页 |
| ·固定化酶操作稳定性的测定 | 第52页 |
| ·结果与分析 | 第52-59页 |
| ·单因素试验结果与分析 | 第52-54页 |
| ·响应面试验结果与分析 | 第54-56页 |
| ·响应面分析 | 第56页 |
| ·验证试验 | 第56-57页 |
| ·酶促反应的最适宜条件确定 | 第57-58页 |
| ·固定化酶的连续操作稳定性 | 第58-59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 6 结论与展望 | 第60-62页 |
| ·结论 | 第60-61页 |
| ·展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 附录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |