| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-19页 |
| 1.1 糖尿病 | 第9-13页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第9-10页 |
| 1.1.2 糖尿病简介 | 第10-12页 |
| 1.1.3 降低血糖药物的研发 | 第12-13页 |
| 1.2 啤酒废酵母与糖尿病 | 第13-17页 |
| 1.2.1 啤酒酵母细胞性质 | 第13-14页 |
| 1.2.2 啤酒酵母功能性营养成分及应用 | 第14-16页 |
| 1.2.3 啤酒废酵母研究现状 | 第16-17页 |
| 1.3 研究内容与意义 | 第17-19页 |
| 1.3.1 主要研究内容 | 第17页 |
| 1.3.2 研究意义 | 第17-19页 |
| 2 实验材料与方法 | 第19-34页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第19-21页 |
| 2.1.1 实验原材料 | 第19页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.3 实验饲料 | 第19页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-34页 |
| 2.2.1 酵母细胞自溶 | 第21-22页 |
| 2.2.2 酵母细胞自溶物固形物含量测定 | 第22页 |
| 2.2.3 自溶方式对酵母自溶液抗氧化能力影响的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.4 MALDI-TOF-MS飞行时间质谱仪测定溶出物分子量分布 | 第23页 |
| 2.2.5 电子扫描显微镜观察酵母沉淀形态 | 第23页 |
| 2.2.6 动物实验模型的建立及分组 | 第23-24页 |
| 2.2.7 组织切片制作过程 | 第24-25页 |
| 2.2.8 血清中生化指标的测定 | 第25-29页 |
| 2.2.9 小鼠肝脏糖脂代谢相关基因mRNA转录水平的测定 | 第29-33页 |
| 2.2.10 数据处理 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-53页 |
| 3.1 酵母提取物固形物的测定 | 第34页 |
| 3.2 自溶方式对酵母自溶液抗氧化能力的影响 | 第34-36页 |
| 3.2.1 酵母废液上清液DPPH·清除率 | 第34-35页 |
| 3.2.2 酵母废液上清液ABTS~+清除率 | 第35-36页 |
| 3.2.3 酵母废液上清液总还原力 | 第36页 |
| 3.3 不同处理方式对啤酒废酵母自溶液多糖分子量分布的影响 | 第36-37页 |
| 3.4 自溶过程对酵母细胞形态的影响 | 第37-38页 |
| 3.5 动物实验生化指标结果与分析 | 第38-47页 |
| 3.5.1 日进食量的变化 | 第38-39页 |
| 3.5.2 日饮水量的变化 | 第39-40页 |
| 3.5.3 体重的变化 | 第40-41页 |
| 3.5.4 血糖的变化 | 第41-42页 |
| 3.5.5 受试物对糖尿病小鼠血脂代谢水平的影响 | 第42-43页 |
| 3.5.6 受试物对小鼠血清氧化应激水平的影响 | 第43-45页 |
| 3.5.7 肝功能酶水平的变化 | 第45-46页 |
| 3.5.8 小鼠肝脏组织病理学形态观察 | 第46-47页 |
| 3.5.9 受试物对糖尿病小鼠胰岛素水平的影响 | 第47页 |
| 3.6 受试物对小鼠肝脏组织脂代谢及氧化应激相关基因mRNA转录水平的影响 | 第47-53页 |
| 3.6.1 小鼠肝脏总RNA纯度的鉴定 | 第47页 |
| 3.6.2 小鼠肝脏总RNA完整性的鉴定 | 第47-48页 |
| 3.6.3 小鼠脂代谢相关基因mRNA表达情况分析 | 第48-50页 |
| 3.6.4 小鼠氧化应激相关基因mRNA表达情况分析 | 第50-51页 |
| 3.6.5 小鼠Leptin基因mRNA表达情况分析 | 第51-53页 |
| 4 结论 | 第53-55页 |
| 4.1 全文总结 | 第53-54页 |
| 4.2 论文的创新点 | 第54页 |
| 4.3 论文的不足之处 | 第54-55页 |
| 5 展望 | 第55-56页 |
| 6 参考文献 | 第56-61页 |
| 7 攻读硕士期间发表的论文 | 第61-62页 |
| 8 致谢 | 第62页 |
