摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
引言 | 第11-12页 |
1 文献综述 | 第12-40页 |
·多肽分离纯化的研究背景 | 第12-20页 |
·多肽的结构与理化性质 | 第12-14页 |
·多肽的生物学活性 | 第14-16页 |
·多肽的生物合成与化学合成 | 第16-17页 |
·多肽分离纯化的基本方法 | 第17-20页 |
·亲水相互作用色谱的研究背景 | 第20-29页 |
·亲水相互作用色谱的概念 | 第20-21页 |
·亲水相互作用色谱的固定相结构 | 第21-22页 |
·高浓度高交联度琼脂糖凝胶的结构特点 | 第22-25页 |
·亲水相互作用色谱分离机理讨论 | 第25-27页 |
·氢键吸附色谱 | 第27-29页 |
·氢键吸附色谱与亲水相互作用色谱的关系 | 第29页 |
·吸附色谱分离机理研究基本原理与方法 | 第29-37页 |
·色谱相系统研究的基本方法 | 第29-30页 |
·吸附等温线 | 第30-33页 |
·单组分吸附等温模型 | 第33-34页 |
·多组分吸附等温模型 | 第34页 |
·吸附能分布与斯卡恰特图 | 第34-37页 |
·制备色谱分离过程设计与优化 | 第37页 |
·论文研究的主要内容 | 第37-40页 |
2 琼脂糖亲水相互作用色谱分离人工合成模式小肽 | 第40-60页 |
·仪器与试剂 | 第41页 |
·仪器与装置 | 第41页 |
·试剂 | 第41页 |
·实验方法 | 第41-44页 |
·流动相与样品的准备及色谱柱的维护 | 第41-42页 |
·色谱系统基本参数的确定 | 第42-43页 |
·流动相组成对保留的影响 | 第43-44页 |
·动态吸附等温线测定 | 第44页 |
·吸附能分布计算与模型拟合 | 第44页 |
·结果与讨论 | 第44-59页 |
·色谱系统基本参数 | 第44-46页 |
·流动相组成对保留的影响 | 第46-51页 |
·动态吸附等温线和吸附能分布测定 | 第51-57页 |
·吸附机理探讨 | 第57-59页 |
·小结 | 第59-60页 |
3 琼脂糖亲水相互作用色谱分离纯化蛋白水解多肽 | 第60-87页 |
·仪器与试剂 | 第60-62页 |
·仪器与装置 | 第60-61页 |
·试剂 | 第61-62页 |
·实验方法 | 第62-67页 |
·固定化胰酶柱的合成 | 第62-64页 |
·蛋白水解多肽混和物的制备 | 第64-65页 |
·凝胶过滤色谱监测蛋白水解程度 | 第65-66页 |
·水解物脱蛋白与脱盐 | 第66页 |
·Superose12琼脂糖凝胶分离蛋白水解多肽 | 第66页 |
·液质联用分析多肽氨基酸序列 | 第66-67页 |
·氨基酸残基保留相关系数计算 | 第67页 |
·结果与讨论 | 第67-85页 |
·固定化胰酶柱的合成 | 第67-68页 |
·蛋白水解多肽混和物的制备及分离前预处理 | 第68-76页 |
·Superose12琼脂糖凝胶分离蛋白水解多肽 | 第76-79页 |
·洗脱峰氨基酸序列分析及氨基酸保留相关系数计算 | 第79-85页 |
·小结 | 第85-87页 |
4 琼脂糖亲水相互作用色谱分离纯化固相合成缩宫素粗品 | 第87-115页 |
·仪器与试剂 | 第88-89页 |
·仪器与装置 | 第88-89页 |
·试剂 | 第89页 |
·实验方法 | 第89-94页 |
·缩宫素反相高效液相色谱C_(18)柱分析 | 第89-90页 |
·四种琼脂糖凝胶介质分离纯化缩宫素粗品 | 第90-93页 |
·缩宫素粗品的脱盐预处理 | 第93-94页 |
·结果与讨论 | 第94-113页 |
·缩宫素反相高效液相色谱C_(18)柱分析结果与标准曲线 | 第94-97页 |
·缩宫素固相合成粗品的检测 | 第97-99页 |
·四种琼脂糖凝胶介质分离纯化缩宫素粗品 | 第99-112页 |
·缩宫素粗品的脱盐预处理 | 第112-113页 |
·小结 | 第113-115页 |
结论与展望 | 第115-118页 |
参考文献 | 第118-126页 |
附录A 论文涉及的待水解底物蛋白的氨基酸序列 | 第126-128页 |
附录B 各洗脱峰所含多肽片段的氨基酸序列 | 第128-131页 |
附录C 蛋白水解多肽保留时间观测值与预测值原始数据 | 第131-133页 |
攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第133-134页 |
致谢 | 第134-135页 |
作者简介 | 第135-137页 |