| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第16-26页 |
| 1.1 糖尿病的概况 | 第16-21页 |
| 1.1.1 糖尿病的流行及危害 | 第16页 |
| 1.1.2 糖尿病的发病机制 | 第16-18页 |
| 1.1.3 糖尿病药物的研究现状 | 第18-21页 |
| 1.2 牛至的研究现状 | 第21-23页 |
| 1.2.1 牛至的化学成分研究现状 | 第21-22页 |
| 1.2.2 牛至的药理作用研究现状 | 第22-23页 |
| 1.3 本论文的研究意义,目的和内容 | 第23-26页 |
| 1.3.1 本论文的研究意义和目的 | 第23页 |
| 1.3.2 本论文的研究内容 | 第23-26页 |
| 第2章 材料与方法 | 第26-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.2 细胞 | 第26页 |
| 2.1.3 植物来源 | 第26页 |
| 2.2 仪器设备 | 第26-27页 |
| 2.3 溶液的配制 | 第27-30页 |
| 2.3.1 DMEM培养基 | 第27页 |
| 2.3.2 PBS溶液的配制 | 第27-28页 |
| 2.3.3 细胞冻存液 | 第28页 |
| 2.3.4 DEPC水的配制 | 第28页 |
| 2.3.5 TAE电泳缓冲液 | 第28页 |
| 2.3.6 过硫酸铵(APS) | 第28页 |
| 2.3.7 丙烯酰胺/甲叉双丙烯酰胺 | 第28-29页 |
| 2.3.8 SDS-PAGE电泳缓冲液 | 第29页 |
| 2.3.9 电转缓冲液 | 第29页 |
| 2.3.10 TBS缓冲液 | 第29页 |
| 2.3.11 TBST缓冲溶液 | 第29页 |
| 2.3.12 封闭液 | 第29-30页 |
| 2.4 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.4.1 HepG2和E47细胞的培养 | 第30页 |
| 2.4.2 牛至叶提取物的制备 | 第30-31页 |
| 2.4.3 牛至叶提取物对细胞的增殖/毒性作用 | 第31页 |
| 2.4.4 牛至叶提取物体外降糖活性研究 | 第31-32页 |
| 2.4.5 牛至叶提取物体外抗氧化活性研究 | 第32页 |
| 2.4.6 牛至叶提取物的主要成分分离与鉴定 | 第32页 |
| 2.4.7 牛至叶提取物中总酚含量 | 第32-33页 |
| 2.4.8 牛至叶提取物中总黄酮含量 | 第33页 |
| 2.4.9 牛至叶提取物对氧化应激损伤的保护作用 | 第33页 |
| 2.4.10 双荧光报告基因实验 | 第33-35页 |
| 2.4.11 总RNA的提取和qRT-PCR检测 | 第35-37页 |
| 2.4.12 总蛋白的提取及其检测 | 第37-39页 |
| 2.4.13 数理统计 | 第39-40页 |
| 第3章 实验结果 | 第40-52页 |
| 3.1 不同采收期牛至叶提取物活性及其化学成分比较 | 第40-46页 |
| 3.1.1 不同采收期牛至叶提取物的细胞增殖/毒性作用 | 第40-41页 |
| 3.1.2 不同采收期牛至叶提取物的体外降糖活性 | 第41-42页 |
| 3.1.3 不同采收期牛至叶提取物体外抗氧化活性比较 | 第42-43页 |
| 3.1.4 不同采收期牛至叶提取物主要化学成分及其总酚和总黄酮含量比较 | 第43-46页 |
| 3.2 牛至叶提取物降糖活性研究 | 第46-48页 |
| 3.2.1 牛至叶提取物对葡萄糖摄取的影响 | 第46-47页 |
| 3.2.2 牛至叶提取物对糖基化的影响 | 第47页 |
| 3.2.3 牛至叶提取物保护氧化应激损伤 | 第47-48页 |
| 3.3 牛至叶提取物降糖作用机制研究 | 第48-52页 |
| 3.3.1 牛至叶提取物对糖异生通路的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.2 牛至叶提取物对脂代谢通路的影响 | 第49页 |
| 3.3.3 牛至叶提取物对氧化应激通路的影响 | 第49-52页 |
| 第4章 讨论 | 第52-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 附录 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
