摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8页 |
前言 | 第9-11页 |
第1章 文献综述 | 第11-19页 |
1.1 疫苗佐剂概述及其机理概况 | 第11页 |
1.2 佐剂种类 | 第11-14页 |
1.2.1 铝盐佐剂 | 第11-12页 |
1.2.2 油乳佐剂 | 第12-14页 |
1.2.3 可生物降解聚合物微球佐剂 | 第14页 |
1.3 传统制备壳聚糖微球的方法 | 第14-15页 |
1.3.1 乳化交联法 | 第15页 |
1.3.2 离子胶凝法 | 第15页 |
1.3.3 凝聚法 | 第15页 |
1.4 传统制备壳聚糖微球的不足及解决问题 | 第15-16页 |
1.4.1 壳聚糖温敏水凝胶 | 第15-16页 |
1.4.2 单相凝胶成球法 | 第16页 |
1.5 壳聚糖微球佐剂的干燥方法 | 第16-18页 |
1.5.1 冷冻干燥法 | 第16页 |
1.5.2 喷雾干燥法 | 第16-17页 |
1.5.3 喷雾干燥中常用的保护剂 | 第17-18页 |
1.6 本文立题依据及目标 | 第18-19页 |
第2章 壳聚糖微球的制备与表征 | 第19-34页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第19-20页 |
2.1.1 实验材料 | 第19页 |
2.1.2 实验仪器 | 第19-20页 |
2.2 实验方法 | 第20-21页 |
2.2.1 壳聚糖微球的制备 | 第20页 |
2.2.2 壳聚糖微球的表征 | 第20-21页 |
2.2.3 保护剂的条件考察 | 第21页 |
2.2.4 微球干粉的制备与表征 | 第21页 |
2.2.5 喷雾干燥工艺的参数优化 | 第21页 |
2.3 结果与讨论 | 第21-32页 |
2.3.1 壳聚糖微球的表征 | 第21-23页 |
2.3.2 保护剂的筛选 | 第23-29页 |
2.3.3 喷雾干燥机参数的考察 | 第29-32页 |
2.4 小结 | 第32-34页 |
第3章 壳聚糖微球的适用范围及免疫评价 | 第34-51页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第34-35页 |
3.1.1 实验材料 | 第34页 |
3.1.2 实验仪器 | 第34-35页 |
3.2 实验方法 | 第35-40页 |
3.2.1 壳聚糖凝胶微球的制备 | 第35-36页 |
3.2.2 动物实验免疫流程 | 第36-37页 |
3.2.3 壳聚糖凝胶微球的其他应用 | 第37-38页 |
3.2.4 抗原特异性抗体滴度测定 | 第38-39页 |
3.2.5 脾细胞悬液的制备与培养 | 第39-40页 |
3.2.6 流式细胞仪检测脾细胞增殖分化及细胞因子的分泌 | 第40页 |
3.2.7 统计学分析 | 第40页 |
3.3 结果与讨论 | 第40-49页 |
3.3.1 壳聚糖谷氨酸盐及pickering乳液的表征 | 第40-41页 |
3.3.2 不同保护剂制备的微球干粉的体液免疫 | 第41-42页 |
3.3.3 保护剂浓度对体液免疫考察 | 第42页 |
3.3.4 不同浓度保护剂下的壳聚糖微球免疫的脾细胞增殖 | 第42-43页 |
3.3.5 考察壳聚糖微球微球粒径的体液免疫 | 第43-44页 |
3.3.6 不同粒径的壳聚糖微球的流式细胞仪测定免疫活化水平 | 第44-45页 |
3.3.7 壳聚糖其他应用免疫评价 | 第45-46页 |
3.3.8 不同应用范围下的流式细胞仪测定免疫活化水平 | 第46-47页 |
3.3.9 细胞因子分泌水平的检测 | 第47-49页 |
3.4 小结 | 第49-51页 |
第4章 壳聚糖微球的体外评价 | 第51-56页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第51-52页 |
4.1.1 实验材料 | 第51页 |
4.1.2 实验仪器 | 第51-52页 |
4.2 实验方法 | 第52-54页 |
4.2.1 小鼠髓源DC(BMDC)细胞的提取与诱导培养 | 第52-53页 |
4.2.2 DC细胞对抗原的摄取 | 第53页 |
4.2.3 壳聚糖微球及其干粉细胞活性的检测 | 第53-54页 |
4.2.4 统计学分析 | 第54页 |
4.3 结果与讨论 | 第54-55页 |
4.3.1 DC细胞对抗原的摄取情况 | 第54-55页 |
4.3.2 细胞活性的研究 | 第55页 |
4.4 小结 | 第55-56页 |
结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
英文缩写 | 第63-64页 |
攻读学位期间发表的学术成果 | 第64页 |