| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 1 前言 | 第13-16页 |
| 2 实验材料与方法 | 第16-24页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 试剂 | 第16-17页 |
| 2.2.1 黑果枸杞黄酮 | 第16页 |
| 2.2.2 常规试剂 | 第16页 |
| 2.2.3 Realtime-PCR | 第16-17页 |
| 2.2.4 抗体 | 第17页 |
| 2.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.4 实验方法 | 第18-24页 |
| 2.4.1 动物模型的构建及实验对象分组 | 第18页 |
| 2.4.2 运动方案及给药 | 第18页 |
| 2.4.3 小鼠日常生活状态观察 | 第18-19页 |
| 2.4.4 肝系数的测定 | 第19页 |
| 2.4.5 样品采集与处理 | 第19页 |
| 2.4.6 肝脏病理组织学检查 | 第19-20页 |
| 2.4.7 血清学生化指标检测 | 第20页 |
| 2.4.8 免疫组织化学检测 | 第20-21页 |
| 2.4.9 Realtime-PCR检测肝组织中NF-κB、TNF-α、IL6、IL-10mRNA表达 | 第21-23页 |
| 2.4.10 质量控制 | 第23页 |
| 2.4.11 统计学分析 | 第23-24页 |
| 3 实验结果 | 第24-32页 |
| 3.1 一般情况 | 第24页 |
| 3.2 小鼠肝脏系数的影响 | 第24-25页 |
| 3.3 血清生化指标的测定 | 第25-26页 |
| 3.4 各组小鼠肝脏病理学变化的影响 | 第26-27页 |
| 3.5 各组小鼠肝脏组织NF-κB、TNF-α、IL-6免疫组织化学染色 | 第27-29页 |
| 3.6 RT-PCR检测各组小鼠肝组织和血液NF-κB、TNF-α、IL-6、IL-10 mRNA变化 | 第29-32页 |
| 4 讨论 | 第32-43页 |
| 4.1 KM小鼠酒精性肝损伤模型的建立 | 第32-35页 |
| 4.2 酒精性肝损伤与炎症反应 | 第35-39页 |
| 4.2.1 NF-κB与肝损伤 | 第35-36页 |
| 4.2.2 酒精致肝损伤后的炎症因子释放 | 第36-39页 |
| 4.3 有氧运动联合黑枸黄酮对小鼠酒精性肝损伤的保护作用 | 第39-41页 |
| 4.4 各细胞因子mRNA在肝组织和血液表达相关分析 | 第41-42页 |
| 4.5 有待进一步研究的问题 | 第42-43页 |
| 5 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 综述 | 第50-62页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 缩略词表 | 第62-63页 |
| 科研情况 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
