致谢 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩写词表 | 第9-11页 |
1 引言 | 第11-16页 |
2 材料与方法 | 第16-25页 |
2.1 实验材料 | 第16-19页 |
2.1.1 实验动物 | 第16页 |
2.1.2 主要试剂 | 第16-18页 |
2.1.3 主要材料 | 第18页 |
2.1.4 主要仪器 | 第18-19页 |
2.2 实验方法 | 第19-25页 |
2.2.1 Smad7-LoxP小鼠基因型鉴定 | 第19-20页 |
2.2.2 小鼠肺组织的获取 | 第20页 |
2.2.3 实时荧光定量PCR | 第20-21页 |
2.2.4 小鼠肺组织蛋白的提取 | 第21页 |
2.2.5 免疫蛋白印迹 | 第21-22页 |
2.2.6 羟脯氨酸含量测定 | 第22页 |
2.2.7 小鼠肺组织切片制备 | 第22-23页 |
2.2.8 免疫组化(IHC) | 第23页 |
2.2.9 免疫荧光(IF) | 第23-24页 |
2.2.10 SA-β-gal染色 | 第24页 |
2.2.11 数据统计及分析 | 第24-25页 |
3 结果 | 第25-44页 |
3.1 条件敲除Smad7与肺组织衰老 | 第25-29页 |
3.1.1 条件敲除Smad7引起肺组织衰老以及形态的改变 | 第25-27页 |
3.1.2 条件敲除Smad7引起肺组织中衰老相关标志物的表达显著增加 | 第27-29页 |
3.2 条件敲除Smad7引起肺组织中肺泡Ⅱ型上皮细胞衰老显著增加 | 第29-35页 |
3.3 条件敲除Smad7产生肺组织纤维化 | 第35-39页 |
3.4 条件敲除Smad7引起肺组织细胞因子表达显著升高 | 第39-41页 |
3.5 条件敲除Smad7显著激活了TGF-β/Smads信号通路 | 第41-44页 |
4 讨论 | 第44-46页 |
参考文献 | 第46-48页 |