| 英汉缩略语名词对照 | 第6-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 第一部分 重组分段荧光素酶-HBc细胞模型建立 | 第19-62页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 1 材料与方法 | 第21-52页 |
| 1.1 材料 | 第21-29页 |
| 1.1.1 质粒 | 第21页 |
| 1.1.2 菌株 | 第21页 |
| 1.1.3 细胞株 | 第21页 |
| 1.1.4 引物 | 第21-23页 |
| 1.1.5 主要试剂 | 第23-25页 |
| 1.1.6 主要自配试剂 | 第25-28页 |
| 1.1.7 主要仪器 | 第28-29页 |
| 1.2 方法 | 第29-52页 |
| 1.2.1 质粒构建 | 第29-44页 |
| 1.2.2 细胞培养和转染 | 第44-45页 |
| 1.2.3 荧光素酶活性检测 | 第45-47页 |
| 1.2.4 HBVDNA和RNA的检测 | 第47-48页 |
| 1.2.5 核心颗粒检测 | 第48-50页 |
| 1.2.6 蛋白检测 | 第50-52页 |
| 2.结果 | 第52-60页 |
| 2.1 分段荧光素酶互补表征HBc二聚体形成的策略 | 第52-53页 |
| 2.2 四种分段荧光素酶对HBc二聚体形成的表征效果 | 第53-55页 |
| 2.3 分段荧光素酶-HBc融合蛋白的功能鉴定 | 第55-56页 |
| 2.4 分段Rluc与HBc的融合蛋白可形成类核衣壳结构 | 第56-58页 |
| 2.5 分段Rluc的互补来源分析 | 第58-60页 |
| 3.讨论 | 第60-62页 |
| 第二部分 靶向HBc二聚体形成药物的初步筛选 | 第62-94页 |
| 前言 | 第62-63页 |
| 1 材料与方法 | 第63-84页 |
| 1.1 材料 | 第63-67页 |
| 1.1.1 质粒 | 第63页 |
| 1.1.2 菌株 | 第63页 |
| 1.1.3 细胞株 | 第63页 |
| 1.1.4 引物 | 第63-64页 |
| 1.1.5 主要试剂 | 第64-66页 |
| 1.1.6 主要自配试剂 | 第66页 |
| 1.1.7 主要仪器 | 第66-67页 |
| 1.1.8 化合物库 | 第67页 |
| 1.2 方法 | 第67-84页 |
| 1.2.1 构建质粒pNCTPuro | 第67-81页 |
| 1.2.2 四环素调控的RlucN-HBc与RlucC-HBc共表达稳定细胞系构建 | 第81-82页 |
| 1.2.3 利用稳定细胞系进行初步药物筛选 | 第82-83页 |
| 1.2.4 细胞毒性检测 | 第83页 |
| 1.2.5 IC50的评估 | 第83-84页 |
| 2 结果 | 第84-92页 |
| 2.1 稳定细胞系NCTP6的建立 | 第84-85页 |
| 2.2 化合物初步筛选结果 | 第85-86页 |
| 2.3 第二轮筛选结果 | 第86-87页 |
| 2.4 第三轮筛选结果 | 第87-90页 |
| 2.5 HBV002的进一步研究结果 | 第90-91页 |
| 2.6 HBV009的进一步研究结果 | 第91-92页 |
| 3 讨论 | 第92-94页 |
| 全文总结 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-100页 |
| 文献综述 | 第100-119页 |
| 参考文献 | 第110-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 攻读博士学位期间的研究成果 | 第120页 |
