| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-13页 |
| 实验材料 | 第13-16页 |
| 1. 主要试剂与耗材 | 第13-14页 |
| 2. 朊病毒细胞株 | 第14页 |
| 3. 主要仪器及设备 | 第14-15页 |
| 4. 常用缓冲液及溶液 | 第15-16页 |
| 实验方法 | 第16-22页 |
| 1. 细胞培养 | 第16页 |
| 2. 外泌体及miRNA的提取 | 第16-17页 |
| 3. 细胞裂解液的制备 | 第17页 |
| 4. 蛋白质浓度测定 | 第17页 |
| 5. 蛋白免疫印迹检测细胞中PrP的变化 | 第17-18页 |
| 6. 实时荧光定量PCR | 第18-19页 |
| 7. 二代测序及生物信息学分析 | 第19-21页 |
| 8. 电镜观察 | 第21-22页 |
| 实验结果 | 第22-63页 |
| 1. 白藜芦醇对SMB-S15细胞中PrP的清除作用 | 第22-23页 |
| 2. 外泌体的提取与鉴定 | 第23-26页 |
| 3. 外泌体中miRNA表达谱的初步分析 | 第26-29页 |
| 4. 实时荧光定量PCR (qRT-PCR)对差异表达的miRNA进行体外验证 | 第29-31页 |
| 5. 白藜芦醇处理SMB-S15细胞过程中外泌体miRNA的变化 | 第31-43页 |
| 5.1 RES4/S15与RES8/S15组外泌体中miRNA的表达情况 | 第31-34页 |
| 5.2 RES4/S15组与RES8/S15组中差异表达miRNA的GO与KEGGpahway分析 | 第34-39页 |
| 5.3 白藜芦醇处理过程中外泌体中miRNA的变化趋势 | 第39-43页 |
| 6. 硫酸戊聚糖与白藜芦醇处理SMB-S15细胞引起的外泌体中miRNA变化的比较 | 第43-63页 |
| 6.1 RES8/S15组与PS/S15组外泌体中miRNA表达情况 | 第43-46页 |
| 6.2 RES8/S15组与PS/S15组差异表达miRNA的GO与KEGG pathway分析 | 第46-51页 |
| 6.3 RES8/S15组与PS/S15组中表达差异4倍以上的miRNA的GO与KEGG pathway分析 | 第51-61页 |
| 6.4 RES8/S15组与PS/S15组中表达差异8倍以上miRNA的筛选 | 第61-63页 |
| 讨论 | 第63-68页 |
| 小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 综述 | 第75-87页 |
| 参考文献 | 第82-87页 |
| 中英文缩略表 | 第87-88页 |
| 个人简历 | 第88-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
